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文章信息
- 苏寒, 张美家, 王怀杰, 李娜, 霍连广, 李桂芝, 戴功, 高志芹, 杨晓云, 曲梅花
- SU Han, ZHANG Meijia, WANG Huaijie, LI Na, HUO Lianguang, LI Guizhi, DAI Gong, GAO Zhiqin, YANG Xiaoyun, QU Meihua
- Exendin-4对胰岛素抵抗人肝癌HepG2细胞脂代谢相关因子基因表达的影响
- Effects of Exendin-4 on expressions of lipid metabolism related genes in HepG2 cells with insulin resistance
- 吉林大学学报(医学版), 2018, 44(01): 36-40
- Journal of Jilin University (Medicine Edition), 2018, 44(01): 36-40
- 10.13481/j.1671-587x.20180107
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文章历史
- 收稿日期: 2017-09-27
2. 潍坊医学院药学院药理学教研室, 山东 潍坊 261053;
3. 潍坊医学院临床医学院生物化学教研室, 山东 潍坊 261053;
4. 潍坊医学院 生物科学与技术学院细胞生物学教研室, 山东 潍坊 261053
2. Department of Pharmacology, School of Pharmacy, Weifang Medical University, Weifang 261053, China;
3. Department of Biochemistry, Weifang Medical University, Weifang 261053, China;
4. School of Biological Science and Technology, Weifang Medical University Department of Biology, Weifang 261053, China
Exendin-4(Ex-4)是从墨西哥巨型蜥蜴的唾液中分离得到的一种氨基酸多肽,可促进胰岛素分泌[1],改善胰岛素抵抗(insulin resistance, IR)。Ex-4具有稳定性好、半衰期长的优点,现已在临床用于治疗2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM),其治疗机制仍未完全阐明[2]。IR与多种疾病的发生有关,其中主要包括T2DM,如何改善IR是寻求治疗T2DM及其他代谢疾病的一个重要途径[3-4]。有研究[5]表明:IR在T2DM中更为普遍,导致了T2DM脂代谢的紊乱。乙酰辅酶A羧化酶(acetyl-CoA carboxylase,ACC)、脂肪酸合成酶(fatty acid synthase,FAS)、固醇调节元件结合蛋白1c(sterol regulatory element-binding protein-1c,SREBP-1c)和载脂蛋白B100(apolipoprotein B100,apoB100)是维持肝脏脂代谢的关键环节[6]。本研究通过建立HepG2细胞IR模型,研究Ex-4处理对IR细胞葡萄糖消耗、细胞内脂肪和甘油三酯(triglyceride, TG)的影响,以及对脂代谢相关因子ACC、FAS、SREBP-1c和apoB100等表达的影响,阐明Ex-4对肝细胞脂代谢的作用机制。
1 材料与方法 1.1 细胞和主要试剂人肝癌HepG2细胞(中国科学院上海生命科学研究院细胞库)。DMEM培养基(美国Hyclone公司),胎牛血清、胰酶、油红O、苏木素和牛胰岛素(北京索莱宝科技有限公司),Ex-4(美国MedChemExpress公司),甘油三酯检测试剂盒(南京建成生物工程研究所),BCA蛋白定量试剂盒和Trizol(北京康为世纪生物科技有限公司),SYBR Green PCR(日本TOYOBO公司),PCR引物(上海生工生物工程有限公司),葡萄糖检测试剂盒(北京普利莱基因技术有限公司)。
1.2 HepG2细胞IR模型建立HepG2细胞按1:3比例传代后,用含10%胎牛血清(FBS)的高糖DMEM培养基,在培养箱中37℃、5%CO2条件下进行培养,待到细胞长满80%左右,将细胞分为对照组和胰岛素组。待细胞培养12h后,对照组加入不含胰岛素的DMEM培养基,将李秀丽等[7]建立模型方法进行改进,胰岛素组分别加入含1×10-8、1×10-7、1×10-6和1×10-5mol·L-1胰岛素的培养基,继续培养24、36和48h。处理后分别取出细胞培养基上清液,应用葡萄糖氧化酶法(GOD-POD)检测上清葡萄糖浓度,计算葡萄糖消耗量(mmol·L-1)。葡萄糖消耗量最低的一组即IR最佳模型组(葡萄糖消耗量=模型初始葡萄糖浓度-建模后葡萄糖浓度)。HepG2细胞建立IR模型(HepG2-IR细胞)后,然后将细胞分为对照组(不含胰岛素诱导)、IR组(IR模型,即HepG2-IR细胞)和Ex-4组(HepG2-IR细胞中加入10nmol·L-1 Ex-4)。
1.3 油红O染色在装有载玻片的6孔板中建立HepG2细胞IR模型(HepG2-IR细胞),IR模型建成后分组同上。吸出培养基,用PBS清洗3次,4%多聚甲醛固定10 min,加入油红O工作液孵育10min;细胞爬片破膜10min,PBS漂洗3次,每次5min,入油红O工作液37℃染色1~2h。苏木素复染1~2min,自来水冲洗,1%盐酸酒精分化数秒,自来水冲洗,氨水返蓝,流水冲洗。在显微镜下观察细胞中脂滴形成情况。用酶标仪测定各组细胞吸光度(A)值,计算细胞含脂率。细胞含脂率=(实验组A值-对照组A值)/对照组A值×100%。
1.4 TG水平检测细胞分组同上。细胞长满约1×106mL-1时,将细胞用胰酶消化,离心留沉淀,PBS洗3次后再次离心,留沉淀;加入少许裂解液进行裂解,取部分上清液检测TG水平。
1.5 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)法检测HepG2细胞中脂类代谢相关因子mRNA表达水平HepG2细胞建立IR模型后,分组同上。每个培养瓶中加入Trizol 1mL,利用Trizol法提取细胞总RNA,RNA定量后进一步逆转录成cDNA。建立PCR反应体系,其中ACC、FAS、SREBP-1c和apoB100及GAPDH引物序列见表 1,以GAPDH为内参基因。反应条件:预变性95℃、10min,变性95℃、10s,退火60℃、30s,共40个循环;熔解曲线为:从55℃到95℃,每隔10s增加0.5℃。使用LightCycler® 480实时荧光定量PCR系统上机扩增,得出实验数据,根据2-ΔΔCt计算各基因的相对表达水平。
Gene | Forward primer (5′-3′) | Reverse primer (5′-3′) |
ACC | CACGCTCAAGTCACCAAGAA | GCAAATGGGAGGCAATAAGA |
FAS | CAAGAACTGCACGGAGGTGT | AGCTGCCAGAGTCGGAGAAC |
SREBP-1c | TTCCCAGCCCCTCAGATAC | GAGAAGCACCAAGGAGACGA |
apoB100 | TCTCGGGAATATTCAGGAACTATTG | CTAAGGATCCTGCAATGTCAAGGT |
GAPDH | GTCGGAGTCAACGGATTTGG | CATGGGTGGAATCATATTGGA |
采用SPSS 20.0统计软件进行统计学分析。葡萄糖消耗量、细胞含脂率、TG水平和脂代谢相关因子mRNA表达水平以x±s表示,多组间样本均数比较采用单因素方差分析。以P < 0.05表示差异有统计学意义。
2 结果 2.1 IR模型建立在不同浓度胰岛素作用下,HepG2细胞在24、36和48h时葡萄糖消耗量见表 2。与对照组比较,胰岛素浓度为1×10-7mol·L-1作用36h, HepG2葡萄糖消耗量最低,故本次实验中应用的胰岛素浓度为1×10-7mol·L-1、作用时间36h为最佳造模条件。
[n=4, x±s,cB/ (mmol·L-1)] | |||
Group | Glucose consumption | ||
(t/h) 24 | 36 | 48 | |
Control | 1.645±0.098 | 1.845±0.138 | 2.148±0.143 |
Insulin(mol·L-1) | |||
1×10-8 | 1.723±0.147* | 1.737±0.042* | 2.148±0.182 |
1×10-7 | 1.703±0.067* | 1.656±0.133* | 1.879±0.127 |
1×10-6 | 1.834±0.183* | 1.762±0.053 | 2.012±0.129 |
1×10-5 | 2.034±0.108* | 1.937±0.067 | 2.388±0.157 |
* P < 0.05 compared with control group at same time. |
HepG2细胞诱导成IR形成后,采用GOD-POD法检测各组细胞葡萄糖消耗量,IR组(36h, 胰岛素浓度为1×10-7 mol·L-1)细胞葡萄糖消耗量[(1.656±0.133)mmol·L-1)]明显低于对照组[(1.845±0.138)mmol·L-1)](P < 0.01),说明IR模型已建立。
与IR组比较,Ex-4组细胞的葡萄糖消耗量[(2.190±0.080)mmol·L-1)]明显升高(P < 0.05)。
2.3 各组细胞的形态表现及TG水平油红O染色结果显示:与对照组比较,IR组HepG2-IR细胞中红色脂滴明显增多;与IR组比较,Ex-4组细胞中红色脂滴明显减少(图 1,见插页二)。与对照组(25%±6%)比较,IR组细胞含脂率(63%± 12%)明显升高(P < 0.05);与IR组比较,Ex-4组细胞含脂率(34%±8%)明显降低(P < 0.05)。各组细胞中TG水平(mmol·g-1)检测:与对照组(0.21±0.03)比较,IR组HepG2-IR细胞中TG水平(0.33±0.08)明显升高(P < 0.05);Ex-4组HepG2-IR细胞中TG水平(0.24±0.04)明显低于IR组(P < 0.05),接近对照组HepG2细胞中TG水平(P>0.05),表明Ex-4通过调节TG的代谢影响细胞的脂质代谢途径,进而减少细胞内脂质的积聚。
2.4 各组细胞中脂类代谢相关因子mRNA表达水平与对照组比较,IR组HepG2-IR细胞中ACC、FAS和SREBP-1c mRNA表达水平明显升高(P < 0.01),apoB100 mRNA表达水平明显降低(P < 0.05);与IR组比较,Ex-4细胞中ACC、FAS和SREBP-1c mRNA表达水平明显降低(P < 0.05),apoB100 mRNA表达水平明显升高(P < 0.01)。见表 3。
(n=3, x±s) | ||||
Group | ACC | FAS | SREBP-1 | ApoB100 |
Control | 1.00±0.00 | 1.00±0.00 | 1.00±0.00 | 1.00±0.00 |
IR | 2.47±0.35** | 2.20±0.26** | 2.50±0.66** | 0.46±0.09* |
Ex-4 | 1.50±0.30△ | 1.76±0.2△ | 1.4±0.30△ | 1.56±0.20△△ |
* P < 0.05,* * P < 0.01 compared with control group;△ P < 0.05,△△ P < 0.01 compared with IR group. |
胰高血糖素样肽1(glucagon-like peptide-1,GLP-1)是肠道分泌的一种肠促胰岛素[8],能够刺激胰岛β细胞分化,改善细胞的胰岛素敏感性,降低血糖,但其半衰期较短,作为临床药物常受到制约[9-11]。作为第一个临床使用的GLP-1类似物药物,Ex-4的特点是可模拟人体内自然分泌的激素,调节血糖水平,且与GLP-1有相似的生物学作用,Ex-4具有半衰期长的优点,在研究中更具有优势[12-13]。
IR与脂代谢异常有密切关联,所以研究脂代谢的变化是寻找改善IR的一个重要途径。本文作者主要是通过观察Ex-4调节脂代谢的相关因子来探讨Ex-4对IR的影响。脂代谢相关因子ACC和FAS是脂肪酸合成限速酶[14],ACC、FAS等因子表达水平明显增加,可引起肝脏内脂肪酸合成增加、积累,导致肝细胞脂代谢异常,从而进一步加重IR;FAS还在结合与转运脂质和调节脂蛋白代谢等方面具有重要作用,其表达水平的升高能够明显增加TG在体内的沉积从而使糖尿病的脂代谢紊乱[15-16]。本研究结果显示:IR形成后,脂肪酸合成增加,脂类物质聚集,ACC和FAS表达水平升高。
SREBP-1c是核转录因子,在脂肪酸的合成中发挥重要作用,SREBP-1c活性升高引起摄入游离脂肪酸增加[17]。本研究显示:HepG2-IR细胞经Ex-4处理后,SREBP-1c表达水平降低,提示Ex-4能够减少游离脂肪酸的生成,改善脂肪酸合成异常的现象,使脂肪酸合成减少。apoB100在肝脏中合成,是低密度脂蛋白的载脂蛋白,参与低密度脂蛋白的转运[18-19]。本研究结果显示:Ex-4处理HepG2-IR细胞后,apoB100 mRNA表达水平升高,说明Ex-4通过影响apoB100表达使其能够加剧游离脂肪酸的转运。
研究[20]表明:Ex-4可提高诱导的3T3-L1脂肪细胞IR模型的葡萄糖摄取量,从而改善脂肪细胞的IR。Ex-4在抑制人或动物体质量增长、促进胆固醇代谢和改善胰岛素敏感性方面具有重要作用,可防止高脂诱导的IR[21-22]。本研究结果显示:Ex-4能够增加HepG2-IR细胞的葡萄糖消耗量,降低TG的水平,与上述文献报道一致。
综上所述,Ex-4可调节脂代谢的过程,改善脂肪酸合成异常,进而改善IR。本研究结果为Ex-4成为临床一线抗糖尿病药物提供了理论依据。
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