吉林大学学报(医学版)  2016, Vol. 42 Issue (05): 843-847

扩展功能

文章信息

宋志强, 沈海山, 王文佳, 吴建臣, 李然伟, 李胜文
SONG Zhiqiang, SHEN Haishan, WANG Wenjia, WU Jianchen, LI Ranwei, LI Shengwen
硫化氢及其合成酶在膀胱癌细胞株中的表达及其作用
Expressions of hydrogen sulfide and its synthases in bladder cancer cell lines and their effects
吉林大学学报(医学版), 2016, 42(05): 843-847
Journal of Jilin University (Medicine Edition), 2016, 42(05): 843-847
10.13481/j.1671-587x.20160501

文章历史

收稿日期: 2016-03-06
硫化氢及其合成酶在膀胱癌细胞株中的表达及其作用
宋志强1,2, 沈海山2, 王文佳1,2, 吴建臣2, 李然伟3, 李胜文1,2     
1. 清华大学医学中心, 北京 100084;
2. 清华大学第一附属医院泌尿外科, 北京 100016;
3. 吉林大学第二医院泌尿外科, 吉林 长春 130041
[摘要]: 目的: 探讨正常膀胱和膀胱癌细胞株中硫化氢(H2S)及其合成酶胱硫醚β合成酶(CBS)和胱硫醚γ裂解酶(CSE)的表达,阐明其在膀胱癌发生发展中的作用。 方法: 选取膀胱癌5637、T24、EJ、UM-UC-3细胞株和人膀胱永生化上皮SV-HUC-1细胞株,Western blotting检测CBS和CSE蛋白酶表达水平,敏感硫电极法检测H2S产率;选取EJ细胞株进行药物处理,实验分组为,① 10 μmol·L-1硫酸氢钠(NaHS)组、50 μmol·L-1NaHS组、100 μmol·L-1NaHS组和对照组,MTT法检测24和48 h细胞生存率;②顺铂组(5 μg·L-1)、顺铂(5 μg·L-1)+NaHS(100 μmol·L-1)组,另设无药物处理为对照组,药物处理48 h,MTT法和流式细胞术分别检测各组细胞增殖活性和凋亡率。 结果: 与SV-HUC-1细胞株比较,膀胱癌5637、T24、EJ和UM-UC-3细胞中CBS和CSE表达及H2S产率均明显增加(P<0.05或P<0.01);外源性H2S可促进EJ细胞增殖,细胞增殖活性随药物剂量增加而升高(P<0.05),且随着药物作用时间的延长而增加(P<0.05)。与顺铂组比较,顺铂联合NaHS组细胞增殖活性明显升高(P<0.05),细胞凋亡率明显下降(P<0.05)。 结论: H2S及其合成酶CBS和CSE在膀胱癌细胞株中有表达且高于膀胱正常上皮细胞,H2S促进膀胱癌细胞增殖并降低顺铂的促细胞凋亡作用。
关键词硫化氢     胱硫醚β合成酶     胱硫醚γ裂解酶     膀胱肿瘤    
Expressions of hydrogen sulfide and its synthases in bladder cancer cell lines and their effects
SONG Zhiqiang1,2, SHEN Haishan2, WANG Wenjia1,2, WU Jianchen2, LI Ranwei3, LI Shengwen1,2     
1. Medical Center, Tsinghua University, Beijing 100084, China;
2. Department of Urology, First Hospital, Tsinghua University, Beijing 100016, China;
3. Department of Urology, Second Hospital, Jilin University, Changchun 130041, China
[Abstract]: Objective: To explore the expressions of endogenous hydrogen sulfide (H2S) and its synthases cystathionine beta synthase (CBS) and cystathionine gamma lyase (CSE) in the cell lines of normal bladder and bladder cancer, and to clarify their mechanism in the development of bladder cancer. Methods: The bladder cancer cell lines (5637, T24, UM-UC-3, EJ) and human bladder epithelial cell line SV-HUC-1 were selected. The expressions of CBS and CSE in bladder cancer and normal cell lines were analyzed by Western blotting assay and the productivities of H2S in cell lines were detected by sensitive sulphur electrode assay. The EJ cells were selected based on the previous experimental results and divided into groups as follows:① 10 μmol·L-1 NaHS group, 50μmol·L-1 NaHS group, 100μmol·L-1 NaHS group and control group. After drug treatment, the cell survival rate was measured by MTT assay at 24 and 48 h. ② 5 μg·L-1 cisplatin group, cisplatin (5 μg·L-1)+NaHS (100 μmol·L-1) group and control group. After medicine treatment, the cell survival rate was measured by MTT assay and the cell apoptotic rate was detected by flow cytometry at 48 h. Results: Compared with the normal bladder cells (SV-HUC-1), the expression levels of CBS and CSE and the productivity of H2S in the bladder cancer cell lines (5637, T24,UM-UC-3 and EJ) were increased obviously (P<0.05or P<0.01). Compared with control group, exogenous H2S promoted the cell proliferation of EJ cells. The cell survival rates were increased with the increase of drug dose (P<0.05), which showed a dose-dependent effect. The cell survival rates were increased with the prolongation of time(P<0.05), which showed a time-dependent effect. After medicine treatment, compared with cisplatin group, the cell viability in cisplatin+NaHS group was increased (P<0.05) and the apoptotic rate was decreased (P<0.05). Conclusion: Endogenous H2S and its synthases CBS and CSE have an increased expression level in bladder cancer cell lines compared with the normal bladder cells. H2S can enhance the proliferation of bladder cancer cells and decrease the apoptosis induced by cisplatin.
Key words: hydrogen sulfide     cystathionine beta synthase     cystathionine gamma lyase     bladder neoplasms    

膀胱癌发病率居中国男性泌尿生殖系恶性肿瘤的第1位,中国恶性肿瘤发病率第8位,占中国恶性肿瘤发病构成的2.5%[1],是泌尿系统最常见的恶性肿瘤之一。多发、容易复发、浸润和转移等是膀胱癌的特点,但目前尚无有效的膀胱肿瘤标记物,其发生机制尚未明确,晚期膀胱癌患者亦常因出现顺铂耐受而致化疗失败[2],故对膀胱癌的早期诊断及有效治疗仍是难题。硫化氢(hydrogen sulfide,H2S)广泛存在于人体内并参与多种病理生理过程[3-5],被认为是人体内一种新的气体信号分子[6]。亦有研究[7]显示:H2S及其合成酶参与肿瘤的病理生理过程,但其在膀胱癌中的表达及作用研究鲜有报道。本研究测定膀胱癌细胞株和膀胱正常上皮细胞株中H2S及其合成酶胱硫醚β合成酶(cystathionine beta synthase,CBS)和胱硫醚γ裂解酶(cystathionine gamma lyase,CSE)的表达水平,同时采用外源性H2S供体硫氢化钠(sodium hydrosulfide,NaHS)处理膀胱癌EJ细胞株,旨在初步探讨H2S及其合成酶在膀胱癌中的表达及作用。

1 材料与方法 1.1 主要试剂和仪器

胎牛血清(Gibco公司,澳大利亚),RPMI-1640培养液(Thermo公司,美国),CBS抗体(Abnova公司,美国),CSE抗体(Santa Cruz公司,美国),全蛋白提取试剂盒和MTT细胞增殖及细胞毒性检测试剂盒(南京凯基生物)。HERA cell-150 CO2细胞培养箱和Multiskan GO全波长酶标仪 (Thermo公司,美国),PXS-270型离子计(上海雷磁仪器厂),DYY-6C型双稳定时电泳仪(北京六一仪器厂)。

1.2 细胞培养和分组

膀胱癌细胞株(5637、T24、EJ和UM-UC-3)及人膀胱上皮永生化细胞株SV-HUC-1由清华大学第一附属医院泌尿医学中心提供,培养在10%胎牛血清的RPMI-1640培养液中,置于37℃、5% CO2培养箱内。根据前期实验结果选取EJ细胞进行药物处理并分组如下:① 10 μmol·L-1 NaHS组、50 μmol·L-1 NaHS组、100 μmol·L-1 NaHS组和对照组;②参照参考文献[8]设顺铂组(5 μg·L-1)和顺铂(5 μg·L-1)+ NaHS(100 μmol·L-1)组,另设无药物处理为对照组。

1.3 Western blotting法检测膀胱癌细胞株和膀胱正常细胞株中CBS和CSE蛋白表达

按全蛋白提取试剂盒说明书操作提取细胞总蛋白,以BCA法测定蛋白浓度。各泳道蛋白上样总量为50 μg,加入5×样品缓冲液,95℃水浴变性5 min。样品蛋白经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,电转移至PVDF膜上,5%脱脂奶粉室温封闭1 h,加一抗4℃孵育过夜,清洗膜3次(每次5 min)后,加二抗室温孵育1 h,弃二抗,振荡清洗3次,ECL显影。凝胶图像分析系统检测条带灰度值,蛋白相对表达水平=目的条带灰度值/GADPH条带灰度值。

1.4 敏感硫电极法检测膀胱癌细胞株和膀胱正常细胞株中H2S产率

参考耿彬等[9]实验方法,制备10%细胞匀浆。取500 μL匀浆液,Bradford法蛋白定量后移至25 mL反应瓶,加入反应液(100 mmol·L-1磷酸缓冲液,pH 7.4;10 mmol·L-1左旋半胱氨酸;2 mmol·L-1磷酸吡多醛),反应瓶内小烧杯中加入NaOH(1 mol·L-1)0.5 mL,用氮气将锥形瓶充盈20 s后,石蜡膜封口。将反应瓶置于37℃水浴中孵育90 min,加入50%三氯乙酸500 μL,37℃再孵育60 min后终止反应。取中央孔液体用敏感硫电极法测定溶液中H2S水平,并计算H2S产率。H2S产率=H2S水平/匀浆蛋白水平/反应时间,结果以nmol·mg-1·min-1表示。

1.5 MTT法检测各组细胞生存率

按MTT试剂盒说明书操作。在96孔板上每孔中加入细胞100 μL(约1×104个细胞)培养24 h。按实验分组处理。药物处理后,96孔板置于培养箱继续培养48 h。每孔加50μL 1×MTT,37℃孵育4 h,平板摇床摇匀,使MTT还原为甲臜,酶标仪在550 nm波长处检测每孔的吸光度(A)值,以A值表示细胞增殖活性。

1.6 流式细胞术Annexin

Ⅴ-FITC/PI双染法检测各组细胞凋亡率 取对数生长期的EJ细胞,将1 mL细胞悬液(细胞数 4×105 mL-1)接种于6孔板,37℃、5% CO2培养箱中培养48 h。按实验分组处理细胞后继续培养48 h。胰酶消化细胞收集于离心管,PBS 洗涤1次,离心,弃上清液,将细胞悬浮于100 μL PBS中,每管加 Annexin Ⅴ- FITC 5 μL,PI 2.5 μL,震荡混匀后置冰上避光染色10 min,每管加400 μL 1×Buffer,经流式细胞术检测细胞凋亡情况。结果判定方法:左上象限数值为坏死细胞(FITC/ PI+),左下象限数值为活细胞(FITC/PI),右上象限数值为晚期凋亡或凋亡继发坏死细胞(FITC+/ PI+),右下象限数值为早期凋亡细胞(FITC+/ PI)。

1.7 统计学分析

采用SPSS 18.0 统计软件对数据进行分析处理。各组细胞株中CBS和CSE蛋白表达水平、H2S产率、细胞生存率和细胞凋亡率等数据均以x±s表示,多组间样本均数比较采用单因素方差分析。以P<0.05表示差异有统计学意义。

2 结 果 2.1 Western blotting 法检测各组细胞株中CBS和CSE蛋白表达

膀胱癌细胞株(5637、T24、EJ和UM-UC-3)中CBS和CSE蛋白表达水平高于人膀胱永生化上皮细胞SV-HUC-1,且差异均有统计学意义(P<0.05),其中EJ细胞株中CBS和CSE表达水平较SV-HUC-1细胞株升高更为明显(P<0.01)。见图 1

图 1 Western blotting法检测膀胱细胞株中CBS和CSE蛋白表达电泳图 Figure 1 Electrophoregram of expressions of CBS and CSE protein in bladder cell lines detected by Western blotting assay
2.2 敏感硫电极法检测各组细胞株中H2S产率

SV-HUC-1、5637、T24、EJ和UM-UC-3细胞中H2S产率分别为(9.20±1.83)、(23.70±2.14)、(27.80±3.57)、(60.50±2.36)和(42.40±2.11) nmol·mg-1·min-1。与膀胱正常上皮细胞SV-HUC-1比较,5637、T24、EJ和UM-UC-3细胞中H2S产率均明显升高(P<0.05),并以EJ细胞株升高最明显(P<0.01)。

2.3 MTT法检测NaHS处理EJ细胞后的细胞增殖活性

外源性NaHS可提高细胞增殖活性,与对照组比较差异有统计学意义(P<0.05),且随着NaHS剂量增加,细胞增殖活性呈上升趋势,各NaHS组组间比较差异均有统计学意义(P<0.05)。见表 1

表 1 不同剂量NaHS处理24和48 h后EJ细胞增殖活性 Table 1 Proliferation activities of EJ cells after treated with different doses of NaHS for 24 and 48 h
(n=9,x±s)
GroupA value
(t/h) 2448
Control 0.409±0.0030.713±0.001
10μmol·L-1 NaHS0.431±0.001*0.792±0.003*
50μmol·L-1 NaHS0.458±0.003*△0.837±0.002*△
100μmol·L-1 NaHS0.494±0.002*△#0.965±0.004*△#
*P<0.05 compared with control group;P<0.05 compared with 10 μmol·L-1 NaHS group;#P<0.05 compared with 50 μmol·L-1 NaHS group.
2.4 MTT法检测顺铂和NaHS处理后各组细胞的增殖活性

与对照组比较,顺铂组和顺铂+NaHS组药物处理后,细胞增殖活性均明显下降。而与顺铂组比较,顺铂+NaHS组EJ细胞的细胞增殖活性明显升高(P<0.05)。见表 2

表 2 不同药物处理EJ细胞48 h后细胞增殖活性和凋亡率 Table 2 Proliferation activities and apoptotic rates of EJ cells after treated with different drugs for 48 h
(n=9,x±s)
Group A value Early apoptotic rate (η/%) Total apoptotic rate (η/%)
Control 0.713±0.001 1.79±0.52 5.29±1.25
Cisplatin 0.354±0.004* 27.32±3.23* 35.88±4.68*
Cisplatin+ NaHS 0.544±0.002*△ 10.82±2.14*△ 17.46±1.81*△
*P<0.05 compared with control group; P<0.05 compared with cisplatin group.
2.5 流式细胞术检测顺铂和NaHS处理细胞后各组的细胞凋亡率

与对照组比较,顺铂组和顺铂+NaHS组药物处理后,细胞凋亡率均升高。与顺铂组比较,顺铂+NaHS组EJ细胞凋亡率明显下降(P<0.05)。见表 2图 2

图 2 流式细胞术检测不同药物处理48 h后各组细胞凋亡率 Figure 2 Apoptotic rates of cells in various groups after treated with different drugs detected by flow cytometry for 48 h
3 讨 论

人体内H2S由重要的一碳单位供体蛋氨酸经转硫途径变为半胱氨酸后,主要由CBS和CSE催化合成[10]。H2S合成酶分布具有组织特异性,神经系统内主要存在CBS表达 [11];主动脉、肺动脉、肠系膜动脉、尾动脉、门静脉和心肌组织中有CSE表达而无CBS表达[12];回肠黏膜等则同时存在有CBS和CSE表达[13]。本实验结果显示:在膀胱癌及膀胱正常上皮细胞株中,CBS和CSE均有表达,且在膀胱癌细胞中2种酶的表达水平明显高于膀胱正常上皮细胞,这为探讨H2S及其合成酶与膀胱癌的关系提供了实验基础,H2S及其合成酶的这种异常表达亦有可能成为膀胱癌诊断的新标志物。

调节细胞增殖与凋亡是内源性H2S发挥作用的主要途径之一。在结肠癌和卵巢癌等肿瘤细胞中,内源性H2S主要发挥促细胞增殖的作用[13],H2S水平增加可促进肿瘤增殖和迁移[14],而降低细胞H2S水平则明显促进肿瘤细胞的凋亡[15]。Sen等[16]研究发现:肿瘤坏死因子α可通过促使转录因子SP1与CSE基因增强子结合,提高CSE蛋白表达,从而增加H2S合成;H2S与NF-κB的P65亚单位发生巯基化反应,进一步促使NF-κB与共活化核糖体蛋白S3结合,上调下游抗凋亡基因的表达,进而起到抗凋亡的作用。本研究结果显示:膀胱癌细胞中的H2S及其合成酶水平明显高于膀胱正常上皮细胞,而外源性供给H2S后,随着剂量的增加和/或药物作用时间的延长,可明显上调膀胱癌EJ细胞的增殖活力,这与文献报道[14-15]结果相符,说明H2S及其合成酶具有促肿瘤细胞增殖的作用,进一步推测Sen等[16]报道的途径可能是膀胱癌异常增殖逃避凋亡的途径之一。

耐药性是临床肿瘤化疗失败的主要因素之一,基于顺铂的化疗方案,如顺铂和吉西他滨(GC)、顺铂联合甲氨蝶呤、长春碱和多柔比星(MVAC)方案被认为是晚期膀胱癌标准的化疗方案[17],但膀胱癌晚期患者常因顺铂耐药而导致化疗失败,因此减少肿瘤细胞顺铂耐药对晚期膀胱癌治疗至关重要。本研究MTT法及流式细胞术实验结果显示:顺铂对膀胱癌EJ细胞具有明显的抑制增殖和促凋亡作用,而外源性H2S干预后,膀胱癌细胞抗顺铂凋亡的能力明显增强,细胞增殖活性亦增强,说明膀胱癌细胞能借助H2S抵抗顺铂的细胞凋亡作用,进行恶性增殖。研究[18]报道:CSE特异性抑制剂炔丙基甘氨酸(PPG)可提高顺铂在膀胱癌中的疗效,这与本研究结果相符。Bhattacharyya等[19]研究结果显示:在卵巢癌细胞中降低CBS表达减少H2S合成后,降低了还原型谷胱甘肽(GSH)水平或降低过氧化氢酶和超氧化物歧化酶的酶活性,从而增加活性氧自由基的产生,而这可导致脱氧核糖核酸的损伤,同时可增强癌细胞对顺铂的敏感性。Ahn等[20]认为:GSH的降低可增强顺铂对膀胱癌细胞株的细胞毒性作用,其表达水平和膀胱癌细胞系顺铂耐药及阿霉素耐药呈正相关关系。H2S在体内代谢的终末产物正是还原性物质GSH,结合本研究结果,癌细胞可能通过上调H2S及合成酶水平,以增加GSH水平,从而抵御顺铂的细胞毒性作用,这可能是膀胱癌顺铂耐药的机制之一。

综上所述,H2S及其合成酶CBS和CSE在膀胱癌细胞系和膀胱正常上皮细胞系中均有表达,在膀胱癌细胞系中H2S及其合成酶表达较膀胱正常上皮细胞明显增加,外源性H2S可增强膀胱癌EJ细胞的增殖活力,可减弱顺铂介导的细胞凋亡。

参考文献
[1] 韩苏军, 张思维, 陈万青, 等. 中国膀胱癌发病现状及流行趋势分析[J]. 癌症进展 , 2013, 1 (11) : 89–95.
[2] Ismaili N, Amzerin M, Flechon A. Chemotherapy in advanced bladder cancer:current status and future[J]. J Hematol Oncol , 2011, 4 (1) : 35–46. DOI:10.1186/1756-8722-4-35
[3] Dursun M, Otunctemur A, Ozbek E, et al. Protective effect of hydrogen sulfide on renal injury in the experimental unilateral ureteral obstruction[J]. Int Braz J Urol , 2015, 41 (6) : 1185–1193. DOI:10.1590/S1677-5538.IBJU.2014.0090
[4] Kuo MM, Kim DH, Jandu S, et al. MPST but not CSE is the primary regulator of hydrogen sulfide production and function in the coronary artery[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol , 2016, 310 (1) : H71–79. DOI:10.1152/ajpheart.00574.2014
[5] Giangregorio N, Tonazzi A, Console L, et al. The mitochondrial carnitine/acylcarnitine carrier is regulated by hydrogen sulfide via interaction with C136 and C155[J]. Biochim Biophys Acta , 2016, 1860 (1PtA) : 20–27.
[6] Zheng Y, Ji X, Ji K, et al. Hydrogen sulfide prodrugs-a review[J]. Acta Pharm Sin B , 2015, 5 (5) : 367–377. DOI:10.1016/j.apsb.2015.06.004
[7] Szabo C, Coletta C, Chao C, et al. Tumor-derived hydrogen sulfide, produced by cystathionine-β-synthase, stimulates bioenergetics, cell proliferation, and angiogenesis in colon cancer[J]. Proc Natl Acad Sci USA , 2013, 110 (30) : 12474–12479. DOI:10.1073/pnas.1306241110
[8] 王志, 张艺, 黄亚琴, 等. 干性基因Nanog在膀胱癌组织中的表达及其对膀胱癌细胞增殖与耐药的作用[J]. 第三军医大学学报 , 2014, 36 (7) : 655–658.
[9] 耿彬, 杜军保, 唐朝枢. 敏感硫电极法在测定心血管组织细胞及血浆胱硫醚-γ-裂解酶/硫化氢的应用[J]. 北京大学学报:医学版 , 2005, 37 (5) : 545–548.
[10] Kimura H. Hydrogen sulfide:its production, release and functions[J]. Amino Acids , 2011, 41 (1) : 113–121. DOI:10.1007/s00726-010-0510-x
[11] 李倩, 刘春风, 胡丽芳. 气体信号分子NO、CO和H2S的生物学研究进展[J]. 生理科学进展 , 2014, 45 (5) : 395–398.
[12] Geng B, Yang J, Qi Y, et al. H2S generated by heart in rat and its effects on cardiac function[J]. Biochem Biophys Res Commun , 2004, 313 (2) : 362–368. DOI:10.1016/j.bbrc.2003.11.130
[13] Xu GY, Winston JH, Shenoy M, et al. The endogenous hydrogen sulfide producing enzyme cystathionine-beta synthase contributes to visceral hypersensitivity in a rat model of irritable bowel syndrome[J]. Mol Pain , 2009, 5 (1) : 44–52. DOI:10.1186/1744-8069-5-44
[14] 洪敏, 唐小卿, 何葵. 硫化氢对人结肠癌细胞增殖和迁移的影响[J]. 南方医科大学学报 , 2014, 24 (5) : 699–703.
[15] Wang TX, Shi XY, Liu YH. Endogenous cystathionine-gamma-lyase/hydrogen sulfide pathway regulates apoptosis of HepG2 cells[J]. Acta Pharm Sin , 2013, 48 (8) : 1233–1240.
[16] Sen N, Paul BD, Gadalla MM, et al. Hydrogen sulfide-linked sulfhydration of NF-κB mediates its antiapoptotic actions[J]. Mol Cell , 2012, 45 (1) : 13–24. DOI:10.1016/j.molcel.2011.10.021
[17] 魏晓龙, 郭和清. 晚期膀胱癌化疗进展[J]. 微创泌尿外科杂志 , 2013, 2 (2) : 146–150.
[18] Satoh M, Kloth DM, Kadhim SA, et al. Modulation of both cisplatin nephrotoxicity and drug resistance in murine bladder tumor by controlling metallothionein synthesis[J]. Cancer Res , 1993, 53 (8) : 1829–1832.
[19] Bhattacharyya S, Saha S, Giri K, et al. Cystathionine beta-synthase (CBS) contributes to advanced ovarian cancer progression and drug resistance[J]. PLoS One , 2013, 8 (11) : e79167. DOI:10.1371/journal.pone.0079167
[20] Ahn H, Lee E, Kim K, et al. Effect of glutathione and its related enzymes on chemosensitivity of renal cell carcinoma and bladder carcinoma cell lines[J]. J Urol , 1994, 151 (1) : 263–267.