吉林大学学报(医学版)  2020, Vol. 46 Issue (01): 188-193     DOI: 10.13481/j.1671-587x.20200133

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李安然, 连丽丽, 姚刚
LI Anran, LIAN Lili, YAO Gang
糖原合成酶激酶3β参与神经病理性疼痛的研究进展
Research progress in glycogen synthase kinase-3β involved in neuropathic pain
吉林大学学报(医学版), 2020, 46(01): 188-193
Journal of Jilin University (Medicine Edition), 2020, 46(01): 188-193
10.13481/j.1671-587x.20200133

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收稿日期: 2019-04-08
糖原合成酶激酶3β参与神经病理性疼痛的研究进展
李安然 , 连丽丽 , 姚刚     
吉林大学第二医院神经内科, 吉林 长春 130041
[摘要]: 神经病理性疼痛(NP)是临床常见的疼痛类型,约占慢性疼痛患者的20%,因疼痛程度重、治疗难度大,严重危害患者的身心健康,其发病机制和治疗靶点一直是疼痛领域研究的热点。糖原合成酶激酶3(GSK-3)是丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶的一种,最初被视为胰岛素依赖性糖原合成的关键蛋白激酶,随后越来越多的研究提示:GSK-3参与调节多种细胞功能活动,能够使多种底物发生磷酸化,包括细胞结构蛋白、转录因子和细胞分裂起始因子等,在蛋白质合成、信号传递、细胞增殖与分化、神经功能和肿瘤形成等多种细胞生理活动中扮演重要角色。GSK-3在哺乳动物中有GSK-3α和GSK-3β2种亚型,GSK-3β通过介导炎症反应参与NP的发生发展过程,应用其抑制剂可以减轻模型动物的NP症状。现对GSK-3β影响NP病理过程的相关文献进行综述,总结GSK-3β在NP中的作用,为NP发病机制和治疗药物研发提供新的靶点和方向。
关键词: 糖原合成酶激酶3    神经病理性疼痛    炎症反应    促炎因子    神经递质    
Research progress in glycogen synthase kinase-3β involved in neuropathic pain
LI Anran , LIAN Lili , YAO Gang

神经病理性疼痛(neuropathic pain,NP)是指躯体感觉系统的损害或疾病导致的疼痛,分为周围性神经病理性疼痛和中枢性神经病理性疼痛2种类型,表现为自发性的感觉过敏、痛觉超敏或异位痛。其临床表现复杂多样,病程长,多数患者病程超过3个月,常常原发致痛病因已经消除或控制,疼痛仍长期存留,严重影响患者的工作、学习和生活[1]。外伤、神经压迫、感染、中毒、营养障碍、代谢紊乱、免疫、遗传、血管病变和肿瘤等多种因素均可引起神经损害,常见的病因包括带状疱疹感染、糖尿病、肿瘤压迫或浸润、化疗和放疗、慢性酒精中毒、梅毒或人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)感染、脑卒中、脊髓损伤、多发性硬化、创伤和术后神经损伤等[2]。NP发病涉及多种机制,包括外周敏化、中枢敏化、胶质细胞激活、离子通道改变和炎症反应等[3]。NP治疗主要采用钙离子通道调节剂(加巴喷丁和普瑞巴林等)、钠离子通道阻断剂(卡马西平和奥卡西平)、三环类抗抑郁药、血清素-去肾上腺素再摄取抑制剂、阿片类药物、神经调控技术、微创治疗和射频治疗等,但总体治疗效果仍不理想,慢性NP患者常伴随失眠、焦虑、抑郁甚至残疾,导致患者生活质量严重下降[3]

糖原合成酶激酶3(glycogen synthase kinase-3,GSK-3)是丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶的一种,参与细胞内多种重要生理功能,如细胞分化、增殖和凋亡等。GSK-3包括GSK-3α和GSK-3β 2种亚型,其中GSK-3β是细胞内多条重要信号通路的关键分子,肿瘤、糖尿病、神经退行性疾病和炎症等均与GSK-3β调节异常存在关联,GSK-3β抑制剂也被用于上述疾病的治疗。近年来,对炎症反应在NP病理过程中发挥作用的研究越来越多,促炎因子或介质在NP的发生和维持中起着重要的作用。有研究[4]显示:GSK-3β可以通过干预促炎因子与抗炎介质之间的平衡来参与NP的发生发展;基础实验[5]证实:应用GSK-3β抑制剂能够减轻模型动物的痛觉过敏,同时显著改善其疼痛症状。GSK-3β与NP的相关性研究为深入探讨NP发生机制、寻找新的治疗靶点提供了思路和方向。

1 GSK-3的生物学特性

GSK-3于1980年由兔的骨骼肌中首次提取纯化出来,是丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,属于丝裂原活化蛋白(mitogen activated protein,MAP)激酶家族。GSK-3在哺乳动物中有GSK-3α和GSK-3β 2种亚型,分别由3和19号染色体编码,相对分子质量为51 000和47 000,二者整体氨基酸序列同源性为85%,中央激酶区域同源性高达98%[6]。尽管有高度的相似性和功能重叠,但2种亚型不可相互替代,敲除GSK-3α基因的小鼠尚可存活,GSK-3β功能的丧失或突变对于胚胎或新生小鼠是致命的[7]。GSK-3广泛分布于人体组织,在神经系统中,GSK-3α主要分布于海马、大脑皮层、纹状体和小脑,GSK-3β在大脑所有部位均有分布,主要表达于神经元及胶质细胞[8]。尽管GSK-3α和GSK-3β均参与神经功能调节,但大多数研究集中于GSK-3β亚型[9]

GSK-3活性受到精细调节,涉及磷酸化、亚细胞定位以及与GSK-3结合蛋白之间的相互作用,其中GSK-3磷酸化是研究最多的调节方式。GSK-3β的负性调节因子是第9位丝氨酸(Serine),该位点磷酸化后GSK-3β活性受到抑制;其正性调节因子是第216位酪氨酸(Tyrosine),该位点磷酸化后GSK-3β活性得到增强[10]。GSK-3也能够使多种底物发生磷酸化,包括细胞结构蛋白、转录因子和细胞分裂起始因子等,在蛋白质合成、信号传递、细胞增殖与分化、神经功能和肿瘤形成等多种细胞生理活动中扮演重要角色[11]

GSK-3作为一种下游调节开关,决定着多种信号通路在接受不同信号刺激后的反应和信息产出,其中经典通路包括:①Wnt-β-连环蛋白(Wnt-β-catenin)信号通路。GSK-3β在Wnt信号通路扮演重要角色,参与组成泛素蛋白酶,分解β-catenin使其保持在较低水平;当GSK-3β被抑制时,β-catenin在细胞质中堆积并进入细胞核,与转录因子结合启动下游靶基因的转录。GSK-3β可以通过该通路调节细胞的增殖、分化、运动和凋亡等过程,还在胚胎发育及成熟组织内稳态维持中发挥重要作用,该通路异常会导致细胞增殖失调控和肿瘤的发生[11]。②磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidlylinositol 3-kinase,PI3K)-蛋白激酶B(protein kinase B, AKT)-GSK-3β信号通路。GSK-3β是最早发现的AKT的直接底物,二者结合后GSK-3β失活,导致转录因子、cAMP反应元件结合蛋白(cAMP-response element binding protein, CREB)、信号转导和转录激活因子1激活,进而影响核因子κB(nuclear factor-κB,NF-κB)和tau蛋白等下游底物的生物活性[12-13]。③猬因子(Hedgehog)信号通路。在胚胎发育过程中,Hedgehog和Wnt信号通路协同作用,指导细胞增殖分化,GSK-3β参与Hedgehog信号通路主要是通过磷酸化GLI家族锌指蛋白(GLI family zincnger,GLI),降解GLI 1和GLI 2,还可以水解GLI3形成抑制因子,使GLI蛋白转移到细胞核,激活Hedgehog信号靶基因的转录[14]。此外GSK-3β还可以通过调控微管动力学参与神经元的发育及轴突延长等。总之,GSK-3β是一种高度保守、多功能化的蛋白质,是调控多种细胞过程所必需的。

2 GSK-3β参与炎症反应

GSK-3β参与20多种转录因子活性的调控,其中包括与炎症有密切关联的NF-κB、CREB和转录激活因子3(signal transduction and activator of transcription 3,STAT3)等。GSK-3β通过一系列生化反应最终调控炎症介质的表达,使炎症因子及趋化因子的生成增加,抗炎因子的生成减少。通路在调节宿主炎症反应过程发挥重要作用,炎症反应过程中,脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)作用于Toll样受体(Toll-like receptors,TLR),激活PI3K,促进肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor,TNF)和白细胞介素12(interleukin-12,IL-12)等炎症因子和介质的产生,GSK-3β作为PI3K通路的下游激酶,可以选择性地调节LPS对TLR的激活,参与促炎因子与抗炎因子的平衡调节。2005年,MARTIN等[15]首次证实上述论点,此后该作用在外周单核/巨噬细胞、树突状细胞、星形胶质细胞和小胶质细胞中得到证实[16]。研究者[15-17]还发现:在肝细胞中抑制GSK-3β,可以在不影响NF-κB的降解及核转位的情况下抑制NF-κB介导的转录,从而大大减少TNF-α、白细胞介素6(interleukin-6, IL-6)、白细胞介素1β(interleukin-1β, IL-1β)和干扰素-γ(interferon-γ,INF-γ)等促炎因子的产生。在脓毒症中,GSK-3β也可以通过活化STAT3,刺激胶质细胞产生IL-6,参与炎性损伤[18]

白细胞介素10(interleukin-10,IL-10)是一种主要的抗炎因子,可以抑制环氧化酶2(cyclooxygenase-2, COX2)、IL-1β和白细胞介素8(interleukin-8,IL-8)的表达,对于感染和炎症的稳态控制是必不可少的,而GSK-3β可以通过PI3K/AKT/GSK-3通路减少CREB核转位,进而抑制IL-10的表达[19]。在神经源性炎症中,星型胶质细胞和小胶质细胞中的GSK-3β被证实可以促进多种趋化因子的产生[20]。急性或慢性束缚应激研究[21]显示:啮齿动物额叶皮层Toll样受体4(Toll-like receptors-4,TLR4)mRNA表达水平升高,进而使趋化因子CCL3、CCL4和CCL5的表达水平较正常增加20%以上,同时诱发TLR4信号下游的转录因子NF-κB的活化,进而诱导多种细胞因子和趋化因子的产生,而这一过程同样离不开GSK-3β的活化。

前列腺素E2(prostaglandin E2,PGE2)同样参与炎症反应的调节,一方面其可以抑制促炎因子(TNF-α和IL-6)及趋化因子(CCL3和CCL4)等的产生,另一方面可以促进抗炎因子IL-10的合成,此外还可以影响T细胞向辅助型T淋巴细胞2(T helper 2 cell,Th2)的分化,而应用GSK-3抑制剂可以促进PGE2的产生[22-23]。在体外实验中,GSK-3β抑制剂可以使IL-6和一氧化氮(NO)的产生减少70%和80%,并上调CD116(小胶质细胞活化的一种标志物)和诱导型一氧化氮合成酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)的表达,GSK-3β可以选择性地促进LPS刺激后的iNOS表达,使NO生成增加[20, 24]。GSK-3β还可以通过对IFN-γ的下游信号通路两面神激酶/信号转导及转录激活因子(janus kinase/signal transducers and activators of transcription, JAK/STAT)进行调控,参与IFN-γ对炎症调控的协同作用。

3 GSK-3β参与NP的病理过程

近年研究[9]表明:GSK-3β能够介导炎症通路并参与痛觉调制,抑制GSK-3β活性有利于减轻炎症和缓解疼痛。部分坐骨神经结扎(partial sciatic nerve ligation, pSNL)诱导的NP动物模型中,在第2~10天观察到模型大鼠产生热痛觉过敏,第6~10天产生机械痛觉过敏,GSK-3β的活性测定显示其在第10天明显升高,应用GSK-3β抑制剂处理后第8~10天大鼠热痛觉过敏得到改善,第6~10天机械痛觉过敏也相应减轻,该实验首次证实GSK-3β可以激活脊髓背角星形胶质细胞参与热痛觉过敏和机械性异常疼痛[25]。短暂的瑞芬太尼接触可以提高疼痛敏感性,采用瑞芬太尼诱导的大鼠切口痛觉过敏模型,于给药前1d和给药后2h、6h、1d、2d、3d、5d和7d进行机械和热痛实验,检测脊髓后角α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异恶唑丙酸受体(α-amino-3 -hydroxy-5-methyl-4-isoxazole-propionic acid receptor, AMPAR)亚基(glur1和glur2)转运、AMPAR磷酸化状态和GSK-3β活性,并采用全细胞膜片钳记录分析了GSK-3β抑制对脊髓背角AMPAR诱导电流的影响,结果表明:GSK-3β调节脊髓背角AMPAR的表达,抑制GSK-3β的活性可以明显减轻芬太尼引起的痛觉过敏[26]。在慢性坐骨神经压迫损伤(CCI)大鼠模型[27]中,磷酸化GSK-3β(pGSK-3β)(Tyr216)有长期增强趋势,pGSK-3β(Ser9)降低,而GSK-3β蛋白水平几乎不变,这是由于CCI模型大鼠脊髓中C-X-C族趋化因子5/C-X-C族趋化因子受体2(C-X-C motif chemokine 5/C-X-C chemokine receptor 2, CXCL5/CXCR2)上调并活化GSK-3β所致;鞘内CXCL5的释放可呈剂量依赖性地引起和维持高痛觉,而应用GSK-3β抑制剂可以预防该情况的发生。在瑞芬太尼诱导的NP小鼠模型中,GSK-3β mRNA和蛋白表达水平增加,pGSK-3β(Ser9)表达水平明显降低[28]

紫杉醇为常用的癌症化疗一线药物,但长期使用往往引起感觉障碍及神经病理性疼痛。研究[28-29]显示:大鼠注射紫杉醇后的第10和20天,模型大鼠脊髓背角GSK-3β的活性增加,蛋白激酶B(protein kinase B, PKB)和哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)则在相同区域和时间点的活性降低,同时伴随脊髓背角胶质纤维酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)和IL-1β蛋白表达水平升高,谷氨酸转运体1(glutamate transporter-1,GLT-1)蛋白表达水平下调;当大鼠预先接受锂(GSK-3β抑制剂)治疗时,以上生物标志物的变化基本被阻止,并且在第1次紫杉醇注射后的第11天逆转机械和热性异常疼痛,与此同时,GSK-3β活性增加、脊髓背角AKT和mTOR活性的降低也均被逆转,GLT-1、GFAP和IL-1β的蛋白表达随之改变,证明抑制脊髓GSK-3β活性是减轻紫杉醇诱导的NP的关键机制,同时也是改善脊髓GLT-1表达及抑制胶质细胞活化和IL-1β过量产生的有效方法。MARTINS等[30]应用醋酸和甲醛诱导小鼠伤害性感受,结果显示:GSK-3β抑制剂AR-A014418和NP031115均可以衰减模型小鼠的痛觉反应,提示GSK-3β参与痛觉调制,GSK-3β抑制剂具有镇痛作用。另有研究[31]显示:腹腔注射AR-A014418能够明显改善坐骨神经损伤模型小鼠的机械性痛觉过敏,其机制与调节血清素和儿茶酚胺途径、抑制促炎因子释放有关。GSK-3β能够调控CREB和NF-κB的核转位,从而调节促炎因子(TNF-α、IL-1β及IL-6)和抗炎因子(IL-10)的平衡,在疼痛的发生发展过程中发挥作用[15]

4 GSK-3β参与NP的机制

NP的发病机制复杂,包括中枢敏化、周围敏化、胶质细胞激活和炎症反应等[32-33]。中枢敏化被认为是NP发生发展最基本也是最关键的机制,可以导致痛觉感受神经元突触传递增强和兴奋性异常升高,使神经元自发性放电增多、感受域扩大,外界刺激阈值降低、阈上刺激反应增强,放大疼痛信号的传递。周围敏化指的是长期慢性损伤导致周围神经放电、传导和神经递质改变以及炎症反应的发生,使得外周神经对疼痛刺激感觉过敏,并将信号上传至中枢,其中神经炎症是外周敏化形成的关键。

胶质细胞(星型胶质细胞和小胶质细胞)作为神经系统的主要免疫细胞,其生物活性的激活以及随后释放的促炎细胞因子在NP的发生和维持过程中同样具有关键作用[34],在几乎所有的NP动物模型中,小胶质细胞和星形胶质细胞均被激活[35]。正常大鼠鞘内注射IL-1β和TNF-α可增强背角神经元的急性反应和终末活动,以及机械性痛觉异常和痛觉过敏[36]。抑制星形胶质细胞和小胶质细胞的活化,可以减少体内细胞因子IL-1β、IL-6和TNF-α的表达,从而减轻神经损伤引起的痛觉过敏;同样,用IL-1β、IL-6和TNF-α拮抗剂治疗可降低炎症、神经损伤和吗啡耐受引起的超敏反应[37]。除了释放促炎细胞因子外,研究者[38]还发现:星形胶质细胞的激活与胶质细胞谷氨酸转运体(glutamate transporter,GLT)的功能障碍有关。脊髓背角胶质细胞GLT蛋白的下调有助于多种病理性疼痛的发生,包括神经损伤引起的神经性疼痛、化疗和吗啡耐受[39]

研究[16, 25, 40-41]表明:GSK-3β可以通过促进外周敏化、中枢敏化和胶质细胞活化等多种机制参与NP的发生发展。GSK-3β能够激活巨噬细胞和单核细胞等炎症细胞释放促炎因子(TNF-α、IL-6和IL-1β等)、趋化因子及其他炎症相关介质[16],上述介质直接或间接作用于外周伤害性感受神经元,通过上调传导神经元的兴奋性、改变离子通道,或者直接引起神经元痛觉过敏,导致外周敏化[40]。研究[25]显示:GSK-3β可以促进小胶质细胞增殖、迁移以及产生炎症因子,诱导炎症引起的神经毒性,应用GSK-3β抑制剂可以减少小胶质细胞的迁移和促炎反应。应用GSK-3β抑制剂还可以减少星型胶质细胞活化标志物GFAP的表达,提示GSK-3β也参与了星型胶质细胞的活化[41]

脊髓谷氨酸受体的过度激活是脊髓背角神经元异常活动主要原因,其主要受3个因素的影响:突触释放谷氨酸的量、GLT清除谷氨酸的速率和突触后谷氨酸受体的活性。而GLT-1是中枢神经系统中主要的谷氨酸转运体,GSK-3活性增强使得GLT-1下调,谷氨酸堆积,诱导机械痛和热痛觉;也可以增加谷氨酸的再摄取进而增加谷氨酸的释放量,由此产生中枢敏化[25]。N-甲基-D-天冬氨酸(n-methyl-D-aspartic acid receptor,NMDA)受体在突触可塑性和慢性疼痛形成中起重要作用[42]。GSK-3β可以促使NMDA受体中的NR1和NR2B亚基从细胞内到细胞表面的转移增加,加强NMDA受体介导的转运功能,NMDA转导活性增强,细胞内钙离子数量增加,微小兴奋性突触后电流(miniature excitatory postsynaptic current,mEPSC)的幅度及频率增加,神经元兴奋性增加,诱发中枢敏化[13]。在中枢神经系统中,痛觉传导系统的兴奋和抑制一直保持着平衡,除了传导神经元的兴奋性增强可以导致中枢敏化外,抑制作用的减弱同样也会引起中枢敏化。γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是中枢神经系统中的主要抑制性神经递质,由抑制性神经元释放,通过作用位于痛觉传导纤维的受体参与疼痛抑制。机体通过谷氨酸-谷氨酰胺循环合成GABA,而GSK-3β可以抑制谷氨酸的转运,从而使得神经胶质细胞谷氨酸摄取不足,导致GABA能神经突触强度降低而使其抑制作用下降,非伤害性刺激即可引起机体产生疼痛,诱发中枢敏化[43]

5 展望

神经炎症是许多神经系统疾病的共同病理生理特征,如阿尔茨海默病、艾滋病伴发的痴呆、多发性硬化和精神分裂症等,GSK-3活性改变或调节异常在其发生发展过程中起关键作用,抑制GSK-3β活性的药物可以改善上述疾病的症状[44-45]。GSK-3β与疼痛的关系是近年来研究的一个新的热点,越来越多的研究证明GSK-3β与NP有着密切的联系。GSK-3β通过介导炎症通路、胶质细胞活化和神经递质改变等参与NP发生的神经敏化。GSK-3β抑制剂对不同NP动物模型的热痛觉过敏和机械性异常疼痛等均有明显的改善作用,提示GSK-3β及其相关通路是NP发生和维持的关键步骤,未来需要进一步研究调节GSK-3β活性的上游通路和GSK-3β影响脊髓感觉调控的下游信号通路,为探讨NP的发病机制和镇痛药物开发提供新的思路。

参考文献
[1]
WRIGHT M E, RIZZOLO D. An update on the pharmacologic management and treatment of neuropathic pain[J]. JAAPA, 2017, 30(3): 13-17. DOI:10.1097/01.JAA.0000512228.23432.f7
[2]
KIGUCHI N, KOBAYASHI D, SAIKA F, et al. Pharmacological regulation of neuopathic pain driven by inflammatory macrophages[J]. Int J Mol Sci, 2017, 18(11): 2296. DOI:10.3390/ijms18112296
[3]
王乙茹, 王浩伟, 袁红斌. 神经病理性疼痛的研究进展[J]. 国际麻醉学与复苏杂志, 2018, 39(2): 165-169. DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-4378.2018.02.017
[4]
ZHANG L Y, LIU Z H, ZHU Q, et al. Resolvin D2 relieving radicular pain is associated with regulation of inflammatory mediators, Akt/GSK-3β signal pathway and GPR18[J]. Neurochem Res, 2018, 43(12): 2384-2392. DOI:10.1007/s11064-018-2666-9
[5]
HE X J, FAN L Y, WU Z H, et al. Gene expression profiles reveal key pathways and genes associated with neuropathic pain in patients with spinal cord injury[J]. Mol Med Rep, 2017, 15(4): 2120-2128. DOI:10.3892/mmr.2017.6231
[6]
宾晓芸, 姜明国, 翁汉荣. 糖原合酶激酶-3, 一个参与多种信号通路的重要调节因子[J]. 中国生物化学与分子生物学报, 2013, 29(12): 1120-1127.
[7]
SHINDE M Y, SIDOLI S, KULE KJ, et al. Phosphoproteomics reveals that glycogen synthase kinase-3 phosphorylates multiple splicing factors and is associated with alternative splicing[J]. J Biol Chem, 2017, 292(44): 18240-18255. DOI:10.1074/jbc.M117.813527
[8]
MEDINA M, AVILA J. New insights into the role of glycogen synthase kinase-3 in Alzheimer's disease[J]. Expert Opin Ther Targets, 2014, 18(1): 69-77. DOI:10.1517/14728222.2013.843670
[9]
MAIXNER D W, WENG H R. The role of glycogen synthase kinase 3 beta in neuro-inflammation and pain[J]. J Pharm Pharmacol, 2013, 1(1): 1-34.
[10]
LOCHHEAD P A, KINSTRIE R, SIBBET G, et al. A chaperone-dependent GSK3beta transitional intermediate mediates activation-loop autophosphorylation[J]. Mol Cell, 2006, 24(4): 627-633. DOI:10.1016/j.molcel.2006.10.009
[11]
TAKAHASHI-YANAGA F. Activator or inhibitor GSK-3 as a new drug target[J]. Biochem Pharmacol, 2013, 86(2): 191-199. DOI:10.1016/j.bcp.2013.04.022
[12]
CORTÉS-VIEYRA R, BRAVO-PATIÑO A, VALDEZ-ALARCÓN J J, et al. Role of glycogen synthase kinase-3 beta in the inflammatory response caused by bacterial pathogens[J]. J Inflamm(Lond), 2012, 9(1): 23. DOI:10.1186/1476-9255-9-23
[13]
YUAN Y, WANG J Y, YUAN F, et al. Glycogen synthase kinase-3β contributes to remifentanil-induced postoperative hyperalgesia via regulating N-methyl-D-aspartate receptor trafficking[J]. Anesth Analg, 2013, 116(2): 473-481. DOI:10.1213/ANE.0b013e318274e3f1
[14]
FORDE J E, DALE T C. Glycogen synthase kinase 3:A key regulator of cellular fate[J]. Cell Mol Life Sci, 2007, 64(15): 1930-1944. DOI:10.1007/s00018-007-7045-7
[15]
MARTIN M, REHANI K, JOPE R S, et al. Toll-like receptor-mediated cytokine production is differentially regulated by glycogen synthase kinase 3[J]. Nat Immunol, 2005, 6(8): 777-784. DOI:10.1038/ni1221
[16]
AJMONE-CAT M A, D'URSO MC, DI BLASIO G, et al. Glycogen synthase kinase 3 is part of the molecular machinery regulating the adaptive response to LPS stimulation in microglial cells[J]. Brain Behav Immun, 2016, 55: 225-235. DOI:10.1016/j.bbi.2015.11.012
[17]
GÖTSCHEL F, KERN C, LANG S, et al. Inhibition of GSK3 differentially modulates NF-κB, CREB, AP-1 and β-catenin signaling in hepatocytes, but fails to promote TNF-α-induced apoptosis[J]. Exp Cell Res, 2008, 314(6): 1351-1366. DOI:10.1016/j.yexcr.2007.12.015
[18]
BEUREL E, JOPE R S. Lipopolysaccharide-induced interleukin-6 production is controlled by glycogen synthase kinase-3 and STAT3 in the brain[J]. J Neuroinflammation, 2009, 6: 9. DOI:10.1186/1742-2094-6-9
[19]
ANTONIV T T, IVASHKIV L B. Interleukin-10-induced gene expression and suppressive functionare selectively modulated by the PI3K-Akt-GSK3 pathway GSK3[J]. Immunology, 2011, 132(4): 567-577. DOI:10.1111/j.1365-2567.2010.03402.x
[20]
BEUREL E, MICHALEK S M, JOPE R S. Innate and adaptive immune responses regulated by glycogen synthase kinase-3(GSK3)[J]. Trends Immunol, 2010, 31(1): 24-31. DOI:10.1016/j.it.2009.09.007
[21]
CHENG Y Y, PARDO M, ARMINi R S, et al. Stress-induced neuroinflammation is mediated by GSK3-dependent TLR4 signaling that promotes susceptibility to depression-like behavior[J]. Brain Behav Immun, 2016, 53: 207-222. DOI:10.1016/j.bbi.2015.12.012
[22]
BAI L, CHANG H M, CHENG J C, et al. Lithium chloride increases COX-2 expression and PGE2 production in a human granulosa-Lutein SVOG cell line via a GSK-3β/β-catenin signaling pathway[J]. Endocrinology, 2017, 158(9): 2813-2825. DOI:10.1210/en.2017-00287
[23]
JING H E, YEN J H, GANEA D. A novel signaling pathway mediates the inhibition of CCL3/4 expression by prostaglandin E2[J]. J Biol Chem, 2004, 279(53): 55176-55186. DOI:10.1074/jbc.M409816200
[24]
YUSKAITIS C J, JOPE R S. Glycogen synthase kinase-3 regulates microglial migration, inflammation, and inflammation-induced neurotoxicity[J]. Cell Signal, 2009, 21(2): 264-273. DOI:10.1016/j.cellsig.2008.10.014
[25]
WENG H R, GAO M, MAIXNER D W. Glycogen synthase kinase 3 beta regulates glial glutamate transporter protein expression in the spinal dorsal horn in rats with neuropathic pain[J]. Exp Neurol, 2014, 252: 18-27. DOI:10.1016/j.expneurol.2013.11.018
[26]
LI Y Z, TANG X H, WANG C Y, et al. Glycogen synthase kinase-3β inhibition prevents remifentanil-induced postoperative hyperalgesia via regulating the expression and function of AMPA receptors[J]. Anesth Analg, 2014, 119(4): 978-987. DOI:10.1213/ANE.0000000000000365
[27]
XU W T, ZHU M, YUAN S T, et al. Spinal CXCL5 contributes to nerve injury-induced neuropathic pain via modulating GSK-3β phosphorylation and activity in rats[J]. Neurosci Lett, 2016, 634: 52-59. DOI:10.1016/j.neulet.2016.10.004
[28]
GAO M, YAN X, WENG H R. Inhibition of glycogen synthase kinase 3β activity with lithium prevents and attenuates paclitaxel-induced neuropathic pain[J]. Neuroscience, 2013, 254: 301-311. DOI:10.1016/j.neuroscience.2013.09.033
[29]
MAIXNER D W, YAN X S, GAO M, et al. Adenosine monophosphate-activated protein kinase regulates interleukin-1β expression and glial glutamate transporter function in rodents with neuropathic pain[J]. Anesthesiology, 2015, 122(6): 1401-1413. DOI:10.1097/ALN.0000000000000619
[30]
MARTINS D F, ROSA A O, GADOTTI V M, et al. The antinociceptive effects of AR-A014418, a selective inhibitor of glycogen synthase kinase-3 beta, in mice[J]. J Pain, 2011, 12(3): 315-322. DOI:10.1016/j.jpain.2010.06.007
[31]
MAZZARDO-MARTINS L, MARTINS D F, STRAMOSK J, et al. Glycogen synthase kinase 3-specific inhibitor AR-A014418 decreases neuropathic pain in mice:evidence for the mechanisms of action[J]. Neuroscience, 2012, 226: 411-420. DOI:10.1016/j.neuroscience.2012.09.020
[32]
COLLOCA L, LUDMAN T, BOUHASSIRA D, et al. Neuropathic pain[J]. Nat Rev Dis Primers, 2017, 3: 17002. DOI:10.1038/nrdp.2017.2
[33]
严广斌. 神经病理性疼痛[J]. 中华关节外科杂志, 2017, 11(4): 446-446.
[34]
GAO Y J, JI R R. Chemokines, neuronal-glial interactions, and central processing of neuropathic pain[J]. Pharmacol Ther, 2010, 126(1): 56-68. DOI:10.1016/j.pharmthera.2010.01.002
[35]
WIESELER-FRANK J, MAIER S F, WATKINS L R. Immune-to-brain communication dynamically modulates pain:physiological and pathological consequences[J]. Brain Behav Immun, 2005, 19(2): 104-111. DOI:10.1016/j.bbi.2004.08.004
[36]
KWON B K, FISHER C G, DVORAK M F, et al. Strategies to promote neural repair and regeneration after spinal cord injury[J]. Spine, 2005, 30(17 Suppl): S3-13.
[37]
RAGHAVENDRA V, TANGA F, DELEO J A. Inhibition of microglial activation attenuates the development but not existing hypersensitivity in a rat model of neuropathy[J]. J Pharmacol Exp Ther, 2003, 306(2): 624-630. DOI:10.1124/jpet.103.052407
[38]
RAMOS K M, LEWIS M T, MORGAN K N, et al. Spinal upregulation of glutamate transporter GLT-1 by ceftriaxone:therapeutic efficacy in a range of experimental nervous system disorders[J]. Neuroscience, 2010, 169(4): 1888-1900. DOI:10.1016/j.neuroscience.2010.06.014
[39]
DOYLE T, CHEN Z M, MUSCOLI C, et al. Targeting the overproduction of peroxynitrite for the prevention and reversal of paclitaxel-induced neuropathic pain[J]. J Neurosci, 2012, 32(18): 6149-6160. DOI:10.1523/JNEUROSCI.6343-11.2012
[40]
LI C R, DENG T R, SHANG Z, et al. Blocking TRPA1 and TNF-α signal improves bortezomib-induced neuropathic pain[J]. Cell Physiol Biochem, 2018, 51(5): 2098-2110. DOI:10.1159/000495828
[41]
WANG Y, JIANG H F, NI J, et al. Pharmacological stimulation of sigma-1 receptor promotes activation of astrocyte via ERK1/2 and GSK3β signaling pathway[J]. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol, 2019, 392(7): 1-12.
[42]
LI X H, MIAO H H, ZHUO M. NMDA receptor dependent long-term potentiation in chronic pain[J]. Neurochem Res, 2019, 44(3): 531-538. DOI:10.1007/s11064-018-2614-8
[43]
JIANG E S, YAN X S, WENG H R. Glial glutamate transporter and glutamine synthetase regulate GABAergic synaptic strength in the spinal dorsal horn[J]. J Neurochem, 2012, 121(4): 526-536. DOI:10.1111/j.1471-4159.2012.07694.x
[44]
LIPINA T V, KAIDANOVICH-BEILIN O, PATEL S, et al. Genetic and pharmacological evidence for schizophrenia-related Disc1 interaction with GSK-3[J]. Synapse, 2011, 65(3): 234-248. DOI:10.1002/syn.20839
[45]
陈蕾, 王欣. 帕金森病疼痛[J]. 中国实用内科杂志, 2019, 39(9): 766-768.