吉林大学学报(医学版)  2019, Vol. 45 Issue (03): 474-478     DOI: 10.13481/j.1671-587x.20190302

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周海霞, 侯力键, 王正明, 田宇, 韩亮, 李密馥
ZHOU Haixia, HOU Lijian, WANG Zhengming, TIAN Yu, HAN Liang, LI Mifu
HOXA4调控Wnt/β-catenin信号通路对裸鼠移植胶质瘤的抑制作用
Inhibitory effect of HOXA4 on transplantationglioma of nude mice through regulating Wnt/β-catenin signal pathway
吉林大学学报(医学版), 2019, 45(03): 474-478
Journal of Jilin University (Medicine Edition), 2019, 45(03): 474-478
10.13481/j.1671-587x.20190302

文章历史

收稿日期: 2018-05-04
HOXA4调控Wnt/β-catenin信号通路对裸鼠移植胶质瘤的抑制作用
周海霞1 , 侯力键2 , 王正明3 , 田宇3 , 韩亮2 , 李密馥4     
1. 吉林大学中日联谊医院特需病房, 吉林 长春 130033;
2. 吉林大学中日联谊医院病理科, 吉林 长春 130033;
3. 吉林大学中日联谊医院神经外科, 吉林 长春 130033;
4. 武警吉林总队医院神经外科, 吉林 长春 130052
[摘要]: 目的: 建立人胶质瘤荷瘤裸鼠模型,探讨HOXA4对胶质瘤U251细胞体内生长的影响以及对Wnt/β-catenin信号通路的调控作用及其机制。方法: 采用慢病毒转染,建立胶质瘤U251细胞稳转同源异型盒基因A4(HOXA4)siRNA细胞系(si-HOXA4)和稳转空载体阴性对照U251细胞系(si-NC)。取对数生长期U251、si-NC和si-HOXA4细胞接种于BALB/c裸鼠颈背部皮下,建立荷瘤裸鼠模型,命名为对照组、si-NC组和si-HOXA4组。观察各组裸鼠成瘤情况并绘制肿瘤生长曲线;培养21 d处死裸鼠后剥离肿瘤组织,测量肿瘤体积和质量;qRT-PCR法检测各组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、CTNNB1和Gsk3β mRNA相对表达量;免疫组织化学(IHC)法检测各组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、β-catenin、Gsk3β、CyclinD1和P53蛋白表达水平。结果: si-HOXA4组裸鼠肿瘤体积和质量小于si-NC组和对照组(P < 0.05);si-HOXA4组裸鼠肿瘤组织中HOXA4 mRNA相对表达量和HOXA4蛋白表达水平低于其他2组(P < 0.05);与si-NC组和对照组比较,si-HOXA4组裸鼠肿瘤组织中CTNNB1 mRNA相对表达量降低(P < 0.05),β-catenin和CyclinD1蛋白表达水平亦降低(P < 0.05),但Gsk3β和P53蛋白表达水平明显升高(P < 0.05)。结论: 抑制人胶质瘤U251细胞HOXA4表达可在体内通过Wnt/β-catenin信号通路调控CyclinD1和P53蛋白的表达,从而抑制荷瘤裸鼠肿瘤的生长。
关键词: 胶质瘤    同源异型盒基因A4    Wnt/β-catenin    信号通路    裸鼠    细胞周期蛋白D1    P53蛋白    
Inhibitory effect of HOXA4 on transplantationglioma of nude mice through regulating Wnt/β-catenin signal pathway
ZHOU Haixia1 , HOU Lijian2 , WANG Zhengming3 , TIAN Yu3 , HAN Liang2 , LI Mifu4     
1. Unit of VIP, China-Japan Union Hospital, Jilin University, Changchun 130033, China;
2. Department of Pathology, China-Japan Union Hospital, Jilin University, Changchun 130033, China;
3. Department of Neurosurgery, China-Japan Union Hospital, Jilin University, Changchun 130033, China;
4. Department of Neurosurgery, Armed Police Jilin General Hospital, Changchun 130052, China
[ABSTRACT]: Objective: To establish the glioma-bearing nude mouse models, and to investigate the effect of HOXA4 on the growth of glioma U251 cells in vivo and its regulatory effect on the Wnt/β-catenin signal pathway and its mechanism. Methods: The glioma U251 cell line stably transfected with HOXA4 siRNA(si-HOXA4) and the U251 cell line stably transfected with blank vector (si-NC) were established by lentivirus transfection. The U251, si-NC, and si-HOXA4 cells were respectively inoculated under the skin of the neck and back of the BALB/c nude mice to establish the glioma-bearing nude mouse models named as control group, si-NC group, and si-HOXA4 group. The tumorigenesis of nude mice in various groups were observed and the tumor growth curve was drawn. The tumor tissue was stripped after the mice were sacrificed on the 21 th day, and the volume and weight of tumor were measured; the relative mRNA expression amounts of HOXA4, CTNNB1, and Gsk3β in tumor tissue of the nude mice in various groups were detected by qRT-PCR method; the expression levels of HOXA4, β-catenin, Gsk3β, CyclinD1, and P53 proteins in tumor tissue of the nude mice in various groups were detected by immunohistochemistry (IHC) method. Results: Compared with si-NC group and control group, the volume and weight of tumor of the nude mice in si-HOXA4 group were significantly decreased(P < 0.05). The relative expression amount of HOXA4 mRNA and the expression level of HOXA4 protein in si-HOXA4 group were significantly lower than those in the other groups (P < 0.05). Compared with si-NC group and control group, the relative expression amount of CTNNB1 mRNA and the expression levels of β-catenin and CyclinD1 proteins in si-HOXA4 group were significantly decreased (P < 0.05), and the expression levels of Gsk3β and P53 proteins were significantly increased (P < 0.05). Conclusion: Inhibition of HOXA4 expression in human glioma U251 cells can regulate the expressions of CyclinD1 and P53 through Wnt/-catenin signal pathway in vivo, thus inhibiting the tumor growth of glioma-bearing nude mice.
KEYWORDS: glioma     homeobox gene A4     Wnt/β-catenin     signal pathway     nude mice     CyclinD1     P53    

胶质瘤是中枢神经系统最常见的原发性恶性肿瘤,具有发病率高和生存率低的特点,目前寻求分子靶点治疗成为胶质瘤新的突破点[1]。同源异型盒基因(homeobox gene HOX)作为转录调节因子在肿瘤细胞增殖分化过程中起到重要的调控作用[2],同源异型盒基因A4(homeobox gene A4, HOXA4)作为HOX家族一员,在肺癌、结肠癌和卵巢癌等不同肿瘤中表达异常并发挥调控作用[3-5]。研究[6]显示:在胚胎干细胞生长发育过程中,HOXA4可作用于Wnt/β-catenin信号通路,同时最新研究[7]显示:在肺癌组织中HOXA4可通过调控Wnt/β-catenin信号通路影响肿瘤的生长和侵袭。本课题组前期体外研究[8]显示:人胶质瘤组织中HOXA4基因表达上调并促进细胞增殖、抑制凋亡从而发挥促癌作用,但是否存在HOXA4通过Wnt/β-catenin信号通路影响胶质瘤恶性生物学行为尚未清楚。本研究通过建立人胶质瘤HOXA4基因敲除荷瘤裸鼠模型,进一步探讨HOXA4对胶质瘤细胞体内生长的影响及其对Wnt/β-catenin信号通路的调控作用。

1 材料与方法 1.1 主要试剂和仪器

TRIzol试剂和Polyfect-V试剂(Invitrogen公司,美国),HiFi-MMLV cDNA第1链合成试剂盒和UltraSYBR Mixture(北京康为世纪生物技术公司),DMEM高糖培养基和FBS(Gibco公司,美国),HOXA4 siRNA载体质粒(Vigene公司,美国),慢病毒包装体系(北京英茂盛业生物科技有限公司),AxyPrep质粒DNA小量试剂盒(Axygen公司,美国),HOXA4、CTNNB1和Gsk3β PCR引物(上海生工生物工程股份有限公司),HOXA4抗体(美国Santa Cruz公司),β-catenin、Gsk3β、CyclinD1和p53抗体(武汉博士德生物技术公司)。荧光定量PCR仪(Applied Biosystems公司,美国),倒置光学显微镜(Nikon公司,日本)。

1.2 人胶质瘤U251细胞培养和慢病毒转染

人胶质瘤U251细胞购于中国科学院上海细胞所,常规培养于DMEM高糖培养基(内含10% FBS、100 U·L-1青霉素和100 mg·L-1链霉素),置于37℃、5% CO2培养箱中。HOXA4 siRNA载体质粒和阴性对照质粒转化E.coil TG1感受态细胞后进行质粒扩增,小剂量提取质粒DNA后按照慢病毒包装体系操作对U251细胞进行Polyfect-V转染。48~72 h后观察绿色荧光蛋白(GFP)表达情况,感染率=(表达GFP的细胞数/总细胞数)× 100%,感染率大于90%即为成功建立稳转细胞。U251细胞稳转HOXA4 siRNA后命名为si-HOXA4,U251细胞稳转阴性对照后命名为si-NC。si-HOXA4上游引物:5′-CGCCCGCCTACACCCGGCAGCACTCGAGTGCTGCCGGGTGTAG- GCGGTTTTTTA-3′;下游引物:5′-CGCGTAA- AAAACCGCCTACACCCGGCAGCACTCGAGT- GCTGCCGGGTGTAGGCGGGCGAT-3′。

1.3 人胶质瘤荷瘤裸鼠模型的建立及分组

9只4~6周龄雌性BALB/c裸鼠购于中国上海斯莱克实验动物有限公司,SPF级。取对数生长期U251、si-NC和si-HOXA4细胞,将细胞用灭菌PBS重悬浮,使细胞密度为1×107 mL-1,采用1 mL注射器细胞吸取100 μL细胞悬液,分别接种于裸鼠颈背部皮下,每种细胞接种3只裸鼠并分组命名为对照组、si-NC组和si-HOXA4组。每3~4 d观察裸鼠肿瘤生长情况,并使用游标卡尺测量肿瘤的体积,肿瘤体积=(长×宽2)/2。培养21 d后荷瘤裸鼠断颈处死,剥离颈背部皮下肿瘤组织,肿瘤称质量。部分肿瘤组织置于液氮中保存用于RNA检测,部分组织以甲醛固定后用于蛋白检测。

1.4 qRT-PCR法检测各组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、CTNNB1和Gsk3β mRNA相对表达量

TRIzol试剂一步法提取组织总RNA,以该RNA为模板使用HiFi-MMLV cDNA第1链合成试剂盒将RNA逆转录为cDNA,对cDNA进行qRT-PCR检测,反应条件为95℃、10 min,95℃、15 s,58℃、30 s,72℃、30 s,共40个循环,结果计算采用2-ΔΔCt方法。内参管家基因为β-actin。HOXA4上游引物:5′-GATAAACTCCAACTACATCG-3′,HOXA4下游引物:5′-GTAGTAGGAGGCAGTGGGCT-3′;CTNNB1上游引物:5′-GGAATGAAGGCGTGGCAACAT- AC-3′,CTNNB1下游引物:5′-GGCGATATCCAAGGGCTTCTCC-3′;Gsk3β上游引物:5′-AT GCCACAGCAGCGTCAG-3′,GSK3β下游引物e:5′-GGTCTGTCCACGGTCTCC-3′;β-actin上游引物:5′ -GGCACCACACCTTCTACAAT-3′,β-actin下游引物:5′-GTGGTGGTGAAGCTGT- AGCC-3′。

1.5 免疫组织化学(IHC)法检测各组裸鼠肿瘤组织中

Wnt/β-catenin信号道路相关蛋白(HOXA4、β-catenin、Gsk3β、CyclinD1和P53蛋白)表达水平3~4 μm石蜡切片经65℃烤片2 h后,以二甲苯脱蜡,梯度乙醇水化,3%过氧化氢浸泡阻断内源性过氧化物酶,柠檬酸高压修复,切片放湿盒内加入一抗孵育45 min,PBS洗涤后加入辣根过氧化物酶标记的二抗孵育30 min,DAB显色,苏木素复染。采用ImagePro Plus 6.0软件检测蛋白平均吸光度(A)值,以A值代表各种蛋白表达水平。

1.6 统计学分析

采用GraphPad Prism 5.0软件绘制统计图。采用SPSS 19.0统计软件进行统计学分析。各组裸鼠肿瘤体积和质量,各组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、CTNNB1和Gsk3β mRNA相对表达量,各组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、β-catenin、Gsk3β、CyclinD1和P53蛋白表达水平以x ±s表示,多组间样本均数比较采用单因素方差分析。以P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 慢病毒转染后U251细胞中GFP表达和感染率

HOXA4 siRNA载体质粒和阴性对照质粒经慢病毒转染至U251细胞后,si-HOXA4和si-NC细胞中均有绿色荧光表达,感染率均大于90%。见图 1(插页一)。

图 1 荧光显微镜观察si-HOXA4组(A)和si-NC组(B)细胞中GFP的表达(×200) Fig. 1 Expressions of GFP in cells in si-HOXA4 (A) and si-NC (B) groups observed under fluorescence microscope(×200)
2.2 各组荷瘤裸鼠模型中肿瘤体积和质量

裸鼠颈背部皮下注射U251、si-NC和si-HOXA4细胞,人胶质瘤荷瘤裸鼠均成活并在注射后5 d可见瘤体形成。见图 2(插页一)。注射后11和14 d si-HOXA4组裸鼠肿瘤体积较si-NC组减小,但组间比较差异无统计学意义(P>0.05);注射后17d,si-HOXA4组裸鼠肿瘤体积[(1.13±0.29)cm3]明显小于si-NC组[(1.94±0.16)cm3](P < 0.05)。注射后21dsi-HOXA4组裸鼠肿瘤体积[(1.65±0.42)cm3]、肿瘤质量[(2.20±0.69)g]明显小于对照组[(4.23±0.72)cm3、(5.71±0.57)g]和si-NC组[(3.67± 0.88)cm3、(5.09±0.73)g] (P < 0.05)。见图 34

图 2 3组荷瘤裸鼠肿瘤组织形态表现(Bar=3cm) Fig. 2 Morphology of tumor tissue of nude mice in three groups(Bar= 3 cm)
* P < 0.05 vs si-NC group; P < 0.05 vs control group. 图 3 3组裸鼠肿瘤生长曲线 Fig. 3 Tumor growth curves of nude mice in three groups
* P < 0.05 vs si-NC group; P < 0.05 vs control group. 图 4 注射后21 d时3组裸鼠肿瘤质量 Fig. 4 Tumor weights of nude mice in three groups 21 dafter injection
2.3 3组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、CTNNB1和Gsk3β mRNA相对表达量

si-HOXA4组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、CTNNB1和Gsk3β mRNA相对表达量分别为0.31±0.04、0.49±0.11和1.06±0.12;与si-NC组比较,si-HOXA4组裸鼠肿瘤组织中HOXA4和CTNNB1相对表达量明显降低(P < 0.05),而Gsk3β相对表达量比较差异无统计学意义(P>0.05)。见图 5

*P < 0.05 vs si-NC group. 图 5 3组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、CTNNB1和Gsk3β mRNA相对表达量 Fig. 5 Relative expression amounts of HOXA4, CTNNB1 and Gsk3β mRNA in tumor tissue of nude mice in three groups
2.4 各组裸鼠肿瘤组织中Wnt/β-catenin信号通路相关蛋白表达水平

与si-NC组比较,si-HOXA4组裸鼠肿瘤组织中HOXA4、β-catenin和CyclinD1表达水平明显降低(P < 0.05),而Gsk3β和P53蛋白表达水平升高(P < 0.05)。见图 6。IHC法检测3组裸鼠肿瘤组织中Wnt/β-catemin信号通路蛋白表达见图 7(插页一)。

*P < 0.05 vs si-NC group. 图 6 3组裸鼠肿瘤组织中Wnt/β-catenin信号通路相关蛋白表达水平 Fig. 6 Expression levels of Wnt/β-catenin signaling pathway-related proteins in tumor tissue of nude mice in three groups
图 7 3组荷瘤裸鼠肿瘤组织中Wnt/B-catenin信号通路相关蛋白的表达(免疫组织化学,×100) Fig. 7 Expressions of proteins related to W nt/ β catenin signaling pathway in tumorr tissue of nudein three mice groups(Immunohistochemistry, ×100)
3 讨论

胶质瘤是中枢神经系统最常见的原发性恶性肿瘤,由于侵袭性高、增殖速度快,使得全切手术困难;其对化疗药物替莫唑胺的耐药性致使患者预后差、复发率高,严重影响患者的生存质量和生存期[1, 9]。随着分子病理学和影像学[10]的发展,研究者们更深入地理解与胶质瘤发生发展相关的基因和信号通路,进一步发掘适宜的靶点基因,并在此基础上开拓胶质瘤诊治的新策略。HOX基因含有可编码同源结构域的高度保守序列,编码螺旋-转角-螺旋结构的蛋白产物,其可作为转录调节因子与靶基因DNA序列特异性结合起调控作用[11-12],HOXA9[13]、HOXA13[14]、HOXC11[15]和HOXD8[16]异常表达与胶质瘤的发生发展密切相关。本课题组前期研究[8]显示:HOXA4在人胶质瘤组织中通过影响细胞增殖、克隆、周期、凋亡率和侵袭能力发挥致瘤性。本实验通过慢病毒转染建立荷瘤裸鼠模型并对HOXA4在体内的作用进行了研究,发现HOXA4低表达能够明显抑制肿瘤的生长。Wnt/β-catenin信号通路作为一种在进化中高度保守的信号通路,在胚胎发育过程中对细胞的分化起决定性作用,并且在成熟细胞的多种生理进程中也起到至关重要的影响作用。Wnt/β-catenin信号通路的异常调节可导致多种疾病,在包括胶质瘤在内多种肿瘤的发生发展中起作用[17]。经典Wnt/β-catenin信号通路中Wnt分泌蛋白通过Frizzled家族跨膜受体蛋白和Dsh/Dvl松散蛋白将信号传至Gsk3β,Gsk3β磷酸化后导致“APC-Axin-Gsk3β复合物”无法形成,阻断了β-catenin蛋白的降解,β-catenin蛋白胞质内聚集并进入核内,与TCF/LEF结合后可调控靶基因发挥生物学作用[18]。本研究证明HOXA4通过转录调控作用上调β-catenin蛋白的表达水平从而激活Wnt信号通路。另一个信号关键蛋白Gsk3β表达水平在HOXA4表达抑制后升高,但其mRNA表达水平未见异常,原因考虑为HOXA4表达抑制后β-catenin蛋白表达下降反馈于“APC-Axin-Gsk3β复合物”的合成,导致游离Gsk3β蛋白表达水平升高,佐证HOXA4调控机制未作用于Wnt/β-catenin信号通路Gsk3β蛋白。而在Wnt/β-catenin信号通路下游研究[19]中发现β-catenin与TCF/LEF结合形成复合物后可作用于CyclinD1启动子,导致CyclinD1表达上调。CyclinD1作为细胞周期基因,其主要功能是促进细胞增殖。本文作者发现HOXA4表达抑制后,CyclinD1蛋白表达水平降低,提示CyclinD1基因参与了胶质瘤HOXA4表达下降后细胞增殖和周期阻滞作用。研究[20]显示:p53作为Wnt/β-catenin信号通路下游靶基因,可通过促进细胞凋亡在不同肿瘤中发挥作用,而且p53已明确参与胶质瘤的发病并可作为胶质瘤基因诊断依据。本研究结果显示:HOXA4表达抑制后P53蛋白表达水平升高,提示p53基因参与了胶质瘤HOXA4表达异常后的促癌作用。

综上所述,抑制HOXA4的表达可在体内通过Wnt/β-catenin信号通路调控CyclinD1和P53的表达,从而抑制人胶质瘤荷瘤裸鼠肿瘤的生长。

参考文献
[1] WELLER M, VANDENBENT M, HOPKINS K, et al. EANO guideline for the diagnosis and treatment of anaplastic gliomas and glioblastoma[J]. Lancet Oncol, 2014, 15(9): e395–e403. DOI:10.1016/S1470-2045(14)70011-7
[2] SHAH N, SUKUMAR S. The Hox genes and their roles in oncogenesis[J]. Nat Rev Cancer, 2010, 10(5): 361–371. DOI:10.1038/nrc2826
[3] TANG X, JIANG J, ZHU J, et al. HOXA4-regulated miR-138 suppresses proliferation and gefitinib resistance in non-small cell lung cancer[J]. Mol Genet Genomics, 2019, 294(1): 85–93. DOI:10.1007/s00438-018-1489-3
[4] BHATLEKAR S, ERTEL A, GONYE G E, et al. Gene expression signatures for HOXA4, HOXA9, and HOXD10 reveal alterations in transcriptional regulatory networks in colon cancer[J]. J Cell Physiol, 2019, 234(8): 13042–13056. DOI:10.1002/jcp.v234.8
[5] KLAUSEN C, LEUNG P C, AUERSPERG N. Cell motility and spreading are suppressed by HOXA4 in ovarian cancer cells:possible involvement of beta1 integrin[J]. Mol Cancer Res, 2009, 7(9): 1425–1437. DOI:10.1158/1541-7786.MCR-08-0466
[6] CHENG S, QIAN F, HUANG Q, et al. HOXA4, down-regulated in lung cancer, inhibits the growth, motility and invasion of lung cancercells[J]. Cell Death Dis, 2018, 9(5): 465. DOI:10.1038/s41419-018-0497-x
[7] FOURNIER M, LEBERT-GHALI C E, BIJL J J. HOXA4 provides stronger engraftment potential to short-term repopulating cells than HOXB4[J]. Stem Cells Dev, 2015, 24(20): 2413–2422. DOI:10.1089/scd.2015.0063
[8] 韩亮, 周海霞, 田男, 等. HOXA4基因抑制对胶质瘤细胞U251的影响[J]. 中国微侵袭神经外科杂志, 2016, 21(7): 321–324.
[9] ALIFIERIS C, TRAFALIS D T. Glioblastoma multiforme:Pathogenesis and treatment[J]. Pharmacol Ther, 2015, 152(6): 63–82.
[10] LI C, CAMPBELL B K, LIU Y, et al.A fast nulti-layer boundary element method for direct numerical simulation of sound propagation in shallow water enviroments[OJ/L].J Comput Phys, 2019, 392: 694-712[2019-05-17].https: //doi.org.10.1016/j.jcp.2019.04.068.
[11] HOLLAND P W, BOOTH H A, BRUFORD E A. Classification and nomenclature of all human homeobox genes[J]. BMC Biol, 2007, 5(1): 47. DOI:10.1186/1741-7007-5-47
[12] 张艳霞, 李跃辉, 张丽红, 等. 沉默HOXA13基因对肝癌HepG2和QGY-7703细胞恶性表型的影响[J]. 吉林大学学报:医学版, 2018, 44(2): 315–320.
[13] COSTA B M, SMITH J S, CHEN Y, et al. Reversing HOXA9 oncogene activation by PI3K inhibition:epigenetic mechanism and prognostic significance in human glioblastoma[J]. Cancer Res, 2010, 70: 453–462. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-09-2189
[14] DUAN R, HAN L, WANG Q, et al. HOXA13 is a potential GBM diagnostic marker and promotes glioma invasion by activating the Wnt and TGF-β pathways[J]. Oncotarget, 2015, 6(29): 27778–27793.
[15] ZHANG X, HAMADA J, HISHIMOTO A, et al. HOXC6 and HOXC11 increase transcription of S100beta gene in BrdU-induced in vitro differentiation of GOTO neuroblastoma cells into Schwannian cells[J]. J Cell Mol Med, 2007, 11: 299–306. DOI:10.1111/jcmm.2007.11.issue-2
[16] MANOHAR C F, SALWEN H R, FURTADO M R, et al. Up-regulation of HOXC6, HOXD1, and HOXD8 homeobox gene expression in human neuroblastoma cells following chemical induction of differentiation[J]. Tumour Biol, 1996, 17: 34–47. DOI:10.1159/000217965
[17] KRIMPENFORT P, BERNS A. Wnt down, tumors wind up[J]. Cell, 2015, 161(7): 1494–1496. DOI:10.1016/j.cell.2015.06.008
[18] TSAI B P, HIVERTERN P, WATERMAN M L. Blending hippo and WNT:sharing messengers and regulation[J]. Cell, 2012, 151(7): 1401–1403.
[19] TETSU O, MCCORMICK F. β-catenin regulates expression of cyclin D1 in colon carcinoma cells[J]. Nature, 1999, 398(6726): 422–426. DOI:10.1038/18884
[20] KUO T L, CHENG K H, SHAN Y S, et al. β-catenin-activated autocrine PDGF/Src signaling is a therapeutic target in pancreatic cancer[J]. Theranostics, 2019, 9(2): 324–336. DOI:10.7150/thno.28201