扩展功能
文章信息
- 侯一玮, 王洪财, 葛汝丽
- 细胞周期G2/M期调控与神经变性疾病
- 国际神经病学神经外科学杂志, 2018, 45(3): 320-323
-
文章历史
收稿日期: 2017-06-12
修回日期: 2018-04-10
神经变性疾病(如帕金森病和阿尔茨海默病)的关键病理变化是神经元变性死亡,但机制不明。近年相继有氧化应激、线粒体功能障碍、蛋白异常聚集及细胞凋亡等机制报道,但仍未有一种病理生理机制能诠释整个神经变性过程。有研究发现,其中许多机制都能导致神经元细胞周期异常,且神经元进入细胞周期后未出现细胞分裂,却启动细胞凋亡[1]。是否细胞周期机制是各种机制的共同通路?还有研究发现细胞周期重启后神经元能完成DNA复制,达到细胞周期末期,但不能完成细胞分裂,且细胞凋亡前存在较长细胞周期G2期滞留。并有报道,变性神经元出现大神经元如4倍体神经元及核内复制过程,而细胞在G2/M期滞留延迟神经元凋亡,提示异常G2/M期调控可能在神经元凋亡中发挥关键作用。近来研究陆续发现细胞周期G2/M期关键调控分子Cdc25、Cdc2和Cyclin B等在变性神经元中表达异常[2],且与凋亡活性分子存在相互作用,由此推断G2/M期关键点调控可能参与调控神经元细胞凋亡过程。
1 G2/M期调控关键分子机制 1.1 G2/M期检测点调控细胞周期是有丝分裂细胞通过一系列细胞事件完成DNA复制和细胞分裂的过程,完整的细胞周期包括G1期(DNA合成前期)、S期(DNA合成期)、G2期(DNA合成后期)和M期(分裂后期)。细胞周期存在关键检查点(checkpoint)是细胞周期中的一套保证DNA复制和染色体准确分配质量的检查机制,是一类负反馈调节机制。整个细胞周期调控受到3个关键检测点调控:G1/S检测点、G2/M检测点和纺锤体检测点,其中G2/M检测点是未复制DNA检测,来监控DNA复制,以保证分裂必须发生于DNA复制之后,其中的主要调控蛋白包括ATR、Chl1、Cdc25和CyclinA/B-Cdc2等,其中细胞周期蛋白B(Cyclin B)-Cdc2是G2/M期的总开关,精确调控G2/M期转化[3]。细胞周期主要是受细胞周期蛋白依赖性激酶(Cyclin dependent kinase, CDKs)和细胞周期蛋白(Cyclins)的精确调控。CDKs是细胞周期调控中的重要调控因子,在细胞周期不同时相可分别被激活,在与Cyclin形成的异二聚体中,CDK作为催化亚基被激活,从而在不同CDK-Cyclin复合体中通过进一步激活下游底物,实现对细胞周期的调控[4]。CDKs在细胞周期调控中磷酸化发挥重要作用,如CDK5介导的磷酸化参与调控ERK/MAPK级联的过度激活,由此导致神经元重新进入S期和发生凋亡[5]。Cdc2,也称细胞周期蛋白依赖性激酶1(Cyclin dependent kinase1, CDK1),是细胞周期中必不可少的细胞周期蛋白激酶[6],首先在裂体生殖酵母中被识别,是裂殖酵母Cdc2基因编码的蛋白,分子量34 kDa,所以又称为p34Cdc2蛋白,即细胞分裂期周期蛋白,活性由磷酸化(Cdc2 Thr161)和Cdc25磷酸酶的去磷酸化(Cdc2 Thr14和Tyr15)共同调节[4]。此外,Cdc2与Cyclin B形成复合体也是Cdc2活化必不可少的,因为Cyclin B含有核定位信号,能促使Cdc2在细胞核中的定位[6]。
1.2 核内复制核内复制是一种特殊细胞周期,也是正常有丝分裂细胞周期的变异形式,细胞只进行DNA复制,而不发生胞质分裂,形成了拥有多线染色体的多倍体细胞,另有研究发现氧化应激也能促进核内复制的发生,植物和动物组织均存在核内复制[7]。现有研究提示细胞分裂相关的CDK活性决定分裂程度和核内复制的发生[8]。近来有学者提出,核内复制可能是神经变性疾病中神经元细胞周期的变异调控形式[9, 10]。
2 G2/M期阻滞参与神经元变性细胞周期的精确调控是细胞在生长发育、分化、增生及死亡中不可缺少的重要环节,近来研究发现异常的细胞周期调控与中枢神经系统疾病相关,如急性损伤和慢性神经变性疾病[11, 12]。在对急性中枢神经系统损伤(脑外伤和中风)的研究中发现,急性中枢神经系统损伤的神经元会重新进入细胞周期而出现凋亡,并阻滞在G1/S期[13, 14],但在对慢性神经变性疾病如帕金森病(Parkinson’s disease, PD)和阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease, AD)中的研究中发现,神经元可经G1/S监测点进入S期,完成DNA复制,而阻滞在G2/M期,且在凋亡之前存在较长的G2/M期滞留[2, 15]。
PD和AD是常见的神经变性疾病,病理特征是神经元变性死亡,但迄今发病机制仍不明确。在AD神经元细胞周期重启中,细胞周期通过G1/S期,完成了S期的DNA复制,进入G2期,着丝粒提前分裂,但未发现染色质凝聚和纺锤体形成,不能完成细胞分裂,而停止在G2/M期[10]。另有研究也发现黑质多巴胺神经元完成DNA复制,细胞周期后期走向凋亡[1],提示细胞周期的G2/M期调控可能在多巴胺神经元变性死亡中发挥重要作用,具体调控尚需更多证据的支持。以上证据支持神经元细胞周期调控异常是AD和PD发病过程中的重要病理过程,且G2/M期调控可能发挥关键作用。
3 核内复制与神经元变性随着研究的不断深入,可以发现AD神经元细胞周期重启后会完成S期的DNA复制,从而形成较多的4倍体细胞(DNA含量而不是染色体),该状态可一直维持至细胞凋亡。进一步的研究发现,在AD患者的海马神经元和前脑神经元中,神经元完成DNA复制过程,发生着丝点的提前分裂[16],但不能完成细胞分裂。有研究表明[17],在对照组和AD患者额叶皮质中发现了多倍体细胞。Mosch等[18]也发现在对照组和AD患者皮质中存在4倍体神经元,并应用3个独立方法进行DNA含量分析发现,对照组大约1%的皮质神经元存在4倍DNA含量,并且这些神经元缺少Cyclin B1的表达;而AD患者皮质中同样出现这些神经元且Cyclin B1表达阳性,这些神经元大约占总神经元的2%[18]。此外,FISH分析显示,在AD患者脑部显示不仅有4倍体神经元的增多,还有染色体数目的增多,同时能观察到非整倍体的神经元存在[17, 18]。而核内复制作为变化的细胞周期形式,只进行DNA复制而不发生分裂[7, 19],可能是神经元出现4倍体或多倍体的原因。另有研究发现,CDK抑制剂能阻止异常的神经元细胞周期G1/S期的转化,从而提示CDK活性可能影响神经元细胞周期及4倍体的形成[20]。这些证据都提示,神经变性疾病中可能存在核内复制,且可能是细胞周期G2/M期停滞重要调控。
4 G2/M期关键分子Cdc2/Cyclin B与神经元变性死亡 4.1 Cdc2参与神经元细胞周期调控尽管有证据显示成熟神经元停止在G0期,在各种基因突变体或环境因素或炎性因子的作用下,促使神经元进入细胞周期,引起细胞周期蛋白依赖性激酶4/细胞周期蛋白D(CDK4/Cyclin D)表达升高,继而激活激酶复合体,转而激活成视网膜细胞瘤蛋白(pRb)和E2F1信号通路引起细胞凋亡[1]。但另有研究却发现,变性的神经元细胞可经过G1/S检测点进入S期,完成DNA的复制并进入G2期,通常情况有丝分裂细胞G2/M期转化的调控因子可促进细胞周期通过G2/M期,完成细胞分裂这一过程。但变性的神经元不但不能完成细胞分裂,反而导致细胞分裂激酶Cdc2和Cyclin B1的表达升高,并激活活性复合体,促使其错误定位于细胞浆中,引起下游活性分子的磷酸化反应,持续参与神经元的周期活动,形成恶性循环,最终导致神经元的变性死亡[15]。Cdc2/CDK1的调节因子,如Cdc25A和Cdc25B也被激活,但Cdc25A和Cdc25B在正常大脑中也有表达,且并未参与正常细胞周期调控,因此目前对其在正常情况下的作用还不是十分明确[10]。
近期研究发现,Cdc2不仅能调控细胞周期还能介导细胞凋亡过程,在AD变性神经元中发现有Cdc2-Cyclin B复合体的形成,且表达上调参与神经元凋亡过程[21]。活性Cdc2和cyclin B与AD特异性有丝分裂磷酸表位共定位,表明Cdc2的磷酸化引起神经原纤维缠结(NFT)形成的神经元tau蛋白[22]。Cdc2在AD神经元中高表达,并且定位于神经胶质和神经原纤维缠结中,从而认为Cdc2亚细胞定位与其功能密切相关。当定位于细胞核中时能促进细胞分裂,而定位于胞浆中引起凋亡过程[23]。有研究在鱼藤酮诱导的PD细胞模型中也发现,Cdc2定位细胞浆中促进细胞凋亡,并且Cdc2活性还能影响半胱氨酸天冬氨酸酶-3(caspase-3)的活性[24],而caspase-3是细胞凋亡的主要执行因子。因此,Cdc2在神经元变性凋亡中发挥重要的调控作用,是连接细胞周期和细胞凋亡的关键纽带,值得深入探讨。
4.2 Cyclin B参与神经元变性过程Cyclin B在整个细胞周期中主要存在胞浆中,在G2期才开始进入细胞核并在G2/M期发挥作用。其受到后期促进复合物/细胞周期蛋白(APC/C)的调控,APC/C是一种关键的E3泛素连接酶复合物,其在调节正常细胞周期转化中起作用。正常情况下,Cyclin B在细胞周期G2/M期中发挥作用,而在M期后,Cyclin B会被APC/C降解,使细胞进入有丝分裂G1期,在G1期,细胞合成mRNA和蛋白质,准备进行有丝分裂,开启新的细胞分裂[25]。细胞周期主要是受CDKs和Cyclins的精确调控,而CDKs的错误表达不仅抑制神经元活性而且促神经元凋亡,且细胞周期蛋白可诱导终末分化的神经元再次进入S期,不能促进神经元增殖,却加速了神经元凋亡[26]。另有研究表明,在AD、PD患者血液中检测到Cyclin B表达较正常对照组明显升高[27, 28]。在AD患者中,Cyclin B还参与了CDC2的激活,促进G2/M期转化并加速神经元凋亡。此外,有研究还发现,神经元中谷氨酸和NMDA的含量增加可促进Cyclin B聚集,促进细胞凋亡[29]。
5 小结综上所述,神经元变性死亡中神经元重新进入细胞周期,且停滞在G2/M期,而核内复制促使神经元细胞周期维持较长的G2期,引起基因组不稳;且G2/M期关键调控分子Cdc2定位于细胞浆中,或Cyclin B异常表达升高,不能完成G2/M期转化却异位调节下游分子引起代谢等改变,产生恶性循环,最终引起神经元变性死亡。
[1] |
Höglinger GU, Breunig JJ, Depboylu C, et al. The pRb/E2F cell-cycle pathway mediates cell death in Parkinson's disease[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2007, 104(9): 3585-3590. DOI:10.1073/pnas.0611671104 |
[2] |
Bajić VP, Su B, Lee HG, et al. Mislocalization of CDK11/PITSLRE, a regulator of the G2/M phase of the cell cycle, in Alzheimer disease[J]. Cell MolBiol Lett, 2011, 16(3): 359-372. |
[3] |
Shen Y, Sherman JW, Chen X, et al. Phosphorylation of Cdc25C by AMP-activated protein kinase mediates a metabolic checkpoint during cell cycle G2/M phase transition[J]. J Biol Chem, 2018, 293(14): 5185-5199. DOI:10.1074/jbc.RA117.001379 |
[4] |
Hustedt N, Durocher D. The control of DNA repair by the cell cycle[J]. Nat Cell Biol, 2016, 19(1): 1-9. |
[5] |
Wen Z, Shu Y, Gao C, et al. CDK5-mediated phosphorylation and autophagy of RKIP regulate neuronal death in Parkinson's disease[J]. Neurobiol Aging, 2014, 35(12): 2870-2880. DOI:10.1016/j.neurobiolaging.2014.05.034 |
[6] |
Candas D, Qin L, Fan M, et al. Experimental Approaches to Study Mitochondrial Localization and Function of a Nuclear Cell Cycle Kinase Cdk1[J]. J Vis Exp, 2016(108): 53417. |
[7] |
Ting CM, Lee YM, Wong CK, et al. 2-Methoxyestradiol induces endoreduplication through the induction of mitochondrial oxidative stress and the activation of MAPK signaling pathways[J]. Biochem Pharmacol, 2010, 79(6): 825-841. DOI:10.1016/j.bcp.2009.10.018 |
[8] |
Gandarillas A, Molinuevo R, Sanz-Gómez N. Mammalian endoreplication emerges to reveal a potential developmental timer[J]. Cell Death Differ, 2018, 25(3): 471-476. DOI:10.1038/s41418-017-0040-0 |
[9] |
Wang H, Chen Y, Chen J, et al. Cell cycle regulation of DNA polymerase beta in rotenone-based Parkinson's disease models[J]. PLoS One, 2014, 9(10): e109697. DOI:10.1371/journal.pone.0109697 |
[10] |
Frade JM, López-Sánchez N. A novel hypothesis for Alzheimer disease based on neuronal tetraploidy induced by p75(NTR)[J]. Cell Cycle, 2010, 9(10): 1934-1941. DOI:10.4161/cc.9.10.11582 |
[11] |
Wang W, Bu B, Xie M, et al. Neural cell cycle dysregulation and central nervous system diseases[J]. Prog Neurobiol, 2009, 89(1): 1-17. DOI:10.1016/j.pneurobio.2009.01.007 |
[12] |
Folch J, Junyent F, Verdaguer E, et al. Role of cell cycle re-entry in neurons:a common apoptotic mechanism of neuronal cell death[J]. Neurotox Res, 2012, 22(3): 195-207. DOI:10.1007/s12640-011-9277-4 |
[13] |
Di Giovanni S, Movsesyan V, Ahmed F, et al. Cell cycle inhibition provides neuroprotection and reduces glial proliferation and scar formation after traumatic brain injury[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2005, 102(23): 8333-8338. DOI:10.1073/pnas.0500989102 |
[14] |
Osuga H, Osuga S, Wang F, et al. Cyclin-dependent kinases as a therapeutic target for stroke[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2000, 97(18): 10254-10259. DOI:10.1073/pnas.170144197 |
[15] |
Sharma R, Kumar D, Jha NK, et al. Re-expression of cell cycle markers in aged neurons and muscles:Whether cells should divide or die?[J]. Biochim Biophys Acta, 2017, 1863(1): 324-336. DOI:10.1016/j.bbadis.2016.09.010 |
[16] |
Zivković L, Spremo-Potparević B, Siedlak SL, et al. DNA damage in Alzheimer disease lymphocytes and its relation to premature centromere division[J]. Neurodegener Dis, 2013, 12(3): 156-163. DOI:10.1159/000346114 |
[17] |
Iourov IY, Vorsanova SG, Liehr T, et al. Aneuploidy in the normal, Alzheimer's disease and ataxia-telangiectasia brain:differential expression and pathological meaning[J]. Neurobiol Dis, 2009, 34(2): 212-220. DOI:10.1016/j.nbd.2009.01.003 |
[18] |
Mosch B, Morawski M, Mittag A, et al. Aneuploidy and DNA replication in the normal human brain and Alzheimer's disease[J]. J Neurosci, 2007, 27(26): 6859-6867. DOI:10.1523/JNEUROSCI.0379-07.2007 |
[19] |
Andriani GA, Faggioli F, Baker D, et al. Whole chromosome aneuploidy in the brain of Bub1bH/H and Ercc1-/Δ7 mice[J]. Hum Mol Genet, 2016, 25(4): 755-765. DOI:10.1093/hmg/ddv612 |
[20] |
Ullah Z, Lee CY, Lilly MA, et al. Developmentally programmed endoreduplication in animals[J]. Cell Cycle, 2009, 8(10): 1501-1509. DOI:10.4161/cc.8.10.8325 |
[21] |
Kim H, Kwon YA, Ahn IS, et al. Overexpression of Cell Cycle Proteins of Peripheral Lymphocytes in Patients with Alzheimer's Disease[J]. Psychiatry Investig, 2016, 13(1): 127-134. DOI:10.4306/pi.2016.13.1.127 |
[22] |
Chang KH, Vincent F, Shah K. Deregulated Cdk5 triggers aberrant activation of cell cycle kinases and phosphates inducing neuronal death[J]. J Cell Sci, 2012, 125(Pt 21): 5124-5137. |
[23] |
Nantajit D, Fan M, Duru N, et al. Cyclin B1/Cdk1 phosphorylation of mitochondrial p53 induces anti-apoptotic response[J]. PLoS One, 2010, 5(8): e12341. DOI:10.1371/journal.pone.0012341 |
[24] |
Wang H, Zhang Z, Huang J, et al. The contribution of Cdc2 in rotenone-induced G2/M arrest and caspase-3-dependent apoptosis[J]. J Mol Neurosci, 2014, 53(1): 31-40. DOI:10.1007/s12031-013-0185-3 |
[25] |
Aulia S, Tang BL. Cdh1-APC/C, cyclin B-Cdc2, and Alzheimer's disease pathology[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2006, 339(1): 1-6. DOI:10.1016/j.bbrc.2005.10.059 |
[26] |
Konishi Y, Lehtinen M, Donovan N, et al. Cdc2 phosphorylation of BAD links the cell cycle to the cell death machinery[J]. Mol Cell, 2002, 9(5): 1005-1016. DOI:10.1016/S1097-2765(02)00524-5 |
[27] |
Zhu X, McShea A, Harris PL, et al. Elevated expression of a regulator of the G2/M phase of the cell cycle, neuronal CIP-1-associated regulator of cyclin B, in Alzheimer's disease[J]. J Neurosci Res, 2004, 75(5): 698-703. DOI:10.1002/(ISSN)1097-4547 |
[28] |
Lee SS, Kim YM, Junn E, et al. Cell cycle aberrations by alpha-synuclein over-expression and cyclin B immunoreactivity in Lewy bodies[J]. Neurobiol Aging, 2003, 24(5): 687-696. DOI:10.1016/S0197-4580(02)00196-3 |
[29] |
Maestre C, Delgado-Esteban M, Gomez-Sanchez JC, et al. Cdk5 phosphorylates Cdh1 and modulates cyclin B1 stability in excitotoxicity[J]. EMBO J, 2008, 27(20): 2736-2745. DOI:10.1038/emboj.2008.195 |